extracted_text:
МЕТОДИЧЕСКИЙ МАТЕРИАЛ НА ТЕМУ:
«АНАЛИЗ ПИЩЕВЫХ ПРОДУКТОВ»
  лекарственных   средств.
Наше   время   отмечено   значительным   расширением   количества
производителей   пищевых   продуктов,   а   также   менее   строгим   подходом   к
применению   разнообразных   пищевых   добавок   и   суррогатов.   Погоня   за
сиюминутной прибылью ведет к тому, что нечестные и безответственные люди
используют   некачественное,   а   порой   и   опасное   для   здоровья   сырье   в
производстве пищевых продуктов. Широко распространились так называемые
биологически активные добавки (БАД), контроль за качеством которых не
столь строг. Вообще в России как развивающейся стране еще слабо поставлен
механизм контроля качества пищевых продуктов, напитков и, что особенно
удручает,
  эта   сфера   требует
дорогостоящего лабораторного оборудования и, главное, квалифицированных
кадров.   А   пока   можно   посоветовать   потребителю   быть   бдительным,
критически   относиться   к   рекламным   наворотам   и   развивать   свою
потребительскую   культуру.   В   частности,   было   бы   весьма   полезно
познакомиться с европейским кодом пищевых добавок, обозначаемым буквой
«Е». Итак, читаем на упаковке сосисок, что в их состав входит «фиксатор
окраски».   Не   оченьто   информативно!   Далее   смотрим,   что   у   этого
«фиксатора» кодовый индекс Е 250. В справочнике находим, что под этим
номером проходит нитрит натрия. Думаю, не было бы большого греха, если
бы   так   и   было   указано   «нитрит   натрия».   Важно,   чтобы   этот   «фиксатор
окраски»   вносился   в   мясной   фарш   согласно   принятой   технологии   и   его
концентрация в продукте соответствовала научно обоснованной норме.
  Конечно,
И с с л е д о в а н и е  я и ч н о й  с к о р л у п ы
О п ы т. Яичную скорлупу освободить от подскорлуповой пленки, промыть
дистиллированной   водой,   слегка   измельчить   и   порошок   разделить   на   две
части.   К   первой   добавить   несколько   капель   концентрированной   азотной
кислоты,   слегка   подогреть.   Наблюдаем   бурное   выделение   пены   (диоксид
углерода),   а   кусочки   скорлупы   размягчаются   и   желтеют.   Их   надо   отмыть
водой от азотной кислоты и добавить примерно 1 мл 5–10 %ного раствора
щелочи. Кусочки скорлупы окрашиваются в яркий желтокоричневый цвет,
что   характерно   для   так   называемой   ксантопротеиновой   реакции.   Таким
образом   можно   убедиться,   что   кроме   минеральных   солей   в   скорлупе
содержится   не   растворяющийся   в   кислотах   белковый   матрикс,   в   составе
которого присутствуют ароматические аминокислоты.
Ко   второй   порции   порошка   добавить   2–3   мл   10   %ной   щелочи   и
прокипятить примерно 10–15 минут при помешивании стеклянной палочкой.
Полученный мутноватый щелочной раствор слить с осадка и, отобрав около 1 мл,   выполнить   биуретовую   реакцию   (просто   добавив   1–2   капли   бледно
голубого   раствора   сульфата   меди).   Появляется   сиреневое   окрашивание,
характерное для белков и полипептидов (осторожно: избыток сульфата меди
маскирует   цвет   меднобелкового   комплекса).   Оставшийся   раствор   белка
делится на три равные части. К первой добавляется несколько капель ацетата
свинца;   появляется   коричневое   окрашивание,   указывающее   на   образование
сульфида   свинца.
  в   белке   скорлупы   содержатся
аминокислоты цистин и цистеин. Со второй порцией ставится цветная реакция
Сакагуши   на   аргинин.   Третья   порция   раствора   нейтрализуется   20   %ной
серной   кислотой,   и   с   ней   ставится   диазореакция   Паули.   Обе   реакции
положительны.
  Следовательно,
Таким   образом,   с   помощью   нехитрых,   уже   знакомых   опытов   можно
установить,
  что   в   ткани   скорлупы   куриного   яйца   содержатся
щелочерастворимые   белки,   в   которых   присутствуют   содержащие   серу
аминокислоты:   аргинин,   гистидин,   тирозин.   Известно,   что   белки   скорлупы
относятся   к   кератинам.   По   литературным   данным,   в   этих   белках
действительно   много   аргинина   (до   11   %),   цистеина   (14   %),   тирозина   и
гистидина (до 6 %).
И с с л е д о в а н и е   к а р т о ф е л ь н ы х   о ч и с т к о в
Картофельные очистки принято считать абсолютно ни на что негодным,
бросовым продуктом. Их место в мусорном баке. Однако если подойти к этим
отходам,  так   сказать,  творчески,  они   могут   явиться   интересным   объектом
химического   анализа   на   уроке   по   химии.   В   клубнях   картофеля   помимо
банального   крахмала,   растительного   белка   и   т.   п.   содержатся   весьма
интересные   циклические   соединения,   которые   биохимики   обозначают
терминами «полифенолы», «биологически активные фенольные соединения»,
«фенолокислоты». Мы будем называть их фенилпропаноидами, хотя данный
термин не охватывает все разнообразие этих продуктов вторичного обмена у
растений.   Среди   «картофельных»   фенилпропаноидов   мы   обнаружим
хлорогеновую (3кофеилхинную) кислоту. Структурные формулы некоторых
растительных фенилпропаноидов: Хлорогеновая   кислота   найдена   не   только   в   клубнях   картофеля.   Мы
находили ее в листьях медовой травы стевии, подсолнечном жмыхе, зернах
кофе (больше в непрожаренных). А авторитетный специалист по биохимии
растений   Дж.  Харборн   обнаружил   хлорогеновую   кислоту   более   чем   в 100
видах диких и культурных растений.
О   важном   значении   хлорогеновой   кислоты   сообщает   В. Л. Кретович   в
своем   руководстве   «Биохимия   растений».   В   классических   работах
российского   академика   А. И. Опарина   указано   на   роль   этого
фенилпропаноида   в   окислении   аминокислот   в   растительной   ткани.
Интересные данные приводит уже упоминавшийся Дж. Харборн. Оказывается,
в   клубнях   картофеля,   пораженного   картофельной   гнилью,   уровень
хлорогеновой   кислоты   повышается   в   несколько   раз.   Причем   последняя
локализуется именно на границе между здоровой и пораженной тканью. Это
легко   наблюдать   при   облучении   срезов   картофельных   клубней
ультрафиолетовыми   лучами   (с   фильтром   315   нм).   В   таких   условиях
хлорогеновая кислота обладает красивым синефиолетовым свечением, такое
же свечение наблюдается, если на полоску фильтровальной бумаги нанести
каплю   раствора   хлорогеновой   кислоты   (или   просто   картофельного   сока).
Вообще,   можно   рекомендовать   для   химического   кабинета   приобретение
простенького   ультрафиолетового   облучателя,
  наша   промышленность
выпускает такие приборы, и они совсем не дороги. Имея такой облучатель,
можно   выполнить   целый   ряд   интересных   лабораторных   работ,   особенно   с
растительными   объектами.   Кстати,   можно   показать   флюоресценцию
денежных купюр 50рублевого и выше достоинства – один из приемов защиты
денег. Светится и заграничная валюта.
Однако вернемся к нашему опыту. Картофельные очистки надо измельчить
и   растереть   в   фарфоровой   ступке   с   примерно   тремя   объемами   воды   или лучше   спиртоводной   смеси.   Полученную   вытяжку   профильтровать   через
бумажный фильтр. К фильтрату просто добавить несколько капель 10 %ного
гидроксида   натрия.   Сразу   наблюдаем   желтое   окрашивание,   интенсивность
которого пропорциональна уровню хлорогеновой кислоты. Окрашивание дают
и   другие   фенилпропаноиды.
  Капли   картофельного   экстракта   на
фильтровальной бумаге, помещенной в атмосферу аммиака, также становятся
желтыми,   но   после   удаления   аммиака   обесцвечиваются.   Для   ленивых
школьников   можно   предложить   совсем   простой   вариант:   на   срез   клубня
нанести маленькую каплю раствора щелочи. Появляется яркожелтое пятно.
При восходящей бумажной хроматографии в системе «бутанол – уксусная
кислота   –   вода»   в   картофельной   вытяжке   обнаруживается   до   4–5
флюоресцирующих в ультрафиолете пятен, часть из которых проявляется в
атмосфере аммиака как желтые пятна.
Заметим попутно, что в картофельных вытяжках легко обнаруживаются
аминосоединения   (свободные   аминокислоты   и   белки),   а   среди   конкретных
аминокислот   всегда   находим   значительное   количество   аргинина   цветной
реакцией Сакагуши.
Хлорогеновая   кислота   обладает,   в   дополнение   к   вышесказанному,
значительной токсичностью в отношении ряда микроорганизмов. Кроме того,
ее   можно   рассматривать   как   сильный   антиоксидант,   т.   е.   она   способна
защищать   биологически   важные   вещества,   в   том   числе   липиды   клеточных
мембран   от   избыточного   окисления   активными   формами   кислорода
(свободнорадикальное окисление). Возможно, с ее присутствием в кофейных
зернах (до 8–9 %) связано благоприятное действие этого напитка. А совсем
недавно немецкие биохимики показали, что хлорогеновая кислота и особенно
полученные   ими   синтетические   производные   кислоты   обладают
противодиабетическим   эффектом,   понижая   уровень   глюкозы   в   крови.
Удалось даже установить механизм такого действия хлорогеновой кислоты:
оказывается, она тормозит активность фермента, участвующего в транспорте
глюкозы через клеточные мембраны.
Заинтересовавшимся   этими   соединениями   можно   дополнительно
порекомендовать достаточно популярную книгу российского фитохимика Б.
А.   Барабоя   «Растительные   фенолы   и   здоровье   человека»,   а   также   более
академичную   книгу   М.   Н.   Запрометова   «Основы   биохимии   фенольных
соединений».
Желтое окрашивание при добавлении щелочи – не единственный способ
обнаружения растительных фенолокислот. Довольно чувствительной является
диазореакция с хлорогеновой кислотой (аналогичная описанной реакции на
гистидин   и   тирозин).   При   добавлении   к   1–2   мл   картофельной   вытяжки
раствора   сульфаниловой   кислоты,   нитрита   натрия   и   щелочи   развивается вишневое   окрашивание.   Таким   способом   аналитикипищевики   определяют
хлорогеновую кислоту в кофейных напитках. Дело в том, что натуральный
кофе содержит до 8 % и даже более этой кислоты, при внесении в порошок
кофе   суррогатов   типа   цикория   и   др.   содержание   хлорогеновой   кислоты,
естественно,   будет   ниже.   Можно   сравнить   равные   навески   порошков
качественного   и   суррогатного   дешевого   кофе   и   обнаружить   в   последнем
более слабую цветную реакцию.
Исходя   из   структуры   фенилпропаноидов   (точнее   фенилпропеноидов),   в
которых   ароматический   фенил   сопряжен   с   двойной   связью   боковой
углеродной   цепи,   можно   ожидать,   что   хлорогеновая,   а   также   кофейная,
феруловая   и   другие   аналогичные   растительные   фенолокислоты   способны
абсорбировать ультрафиолетовую часть спектра в диапазоне 300–400 нм, и
это еще один способ определять их в растворах. Конечно, для этого надо
иметь, по крайней мере, отечественный фотоэлектроколориметр марки КФК
2 или КФК3.
В   заключение   приведём   цитату   из   книги   Т.   Гудвина   и   Э.   Мерсера
«Введение   в   биохимию   растений»   (1986   г.):   «Растения   способны
синтезировать   много   тысяч   соединений,   содержащих   один   или   более
фенольных   остатков».   Потомуто   мы   здесь,   по   крайней   мере,   об   одной
представительнице этого обширного класса веществ – о хлорогеновой кислоте
– и информируем читателя.
И з у ч е н и е  с о с т а в а  з е л е н о г о  о г у р ц а
О   п   ы   т.   Срезать   немного   кожуры   свежего   огурца   и   растереть   ее   в
фарфоровой   ступке   с   небольшим   объемом   воды.   Надосадочную   жидкость
осторожно   слить   в   пробирку   (или   отфильтровать).   Полученную   бледно
зеленую взвесь разделить на 4 части и с каждой выполнить реакции:
на аргинин (реакция Сакагуши);
гистидин (реакция Паули);
аминоазот (нингидриновая реакция);
мочевину и уреиды (реакция с диметилглиоксимом).
Нами   проверено   –   все   реакции   положительные,   т.   е.   в   огуречном   соке
содержатся   перечисленные   вещества.
(с
диметилглиоксимом) нуждается в комментарии. Дело в том, что эту цветную
реакцию дает не только мочевина, о чем говорилось ранее, но и некоторые
другие соединения, получившие название уреидов. Уреиды – это соединения,
содержащие группу NH2CONH–.
  Последняя   реакция
Формулы некоторых распространенных уреидов приведены ниже: Среди них особенно интересна уреидоаминокислота цитруллин (сitrullus –
арбуз).   Ясно,   что   цитруллин   впервые   был   обнаружен   в   арбузе.   Но   вот
оказывается, что он присутствует и в огурцах. Доказать, что цветную реакцию
с диметилглиоксимом дает цитруллин, а не мочевина, достаточно просто. Для
этого в огуречную вытяжку надо добавить щепотку соевой муки (содержит
уреазу,  фермент,  разлагающий   мочевину)   и   выдержать   такую   пробу  30–60
минут.  Если   в   пробе   имеется   мочевина,   окраска   с  диметилглиоксимом   не
развивается,   если   цитруллин   –   пурпурное   окрашивание   сохраняется.
Цитруллин содержится не только в растениях. Его можно обнаружить в крови
и тканях животных, где он выполняет важную роль в орнитиновом цикле, в
биосинтезе мочевины. Фармакологи предполагают, что препараты цитруллина
– малеата обладают стимулирующим действием на спортсменов. Выпускается
лекарственный препарат под названием «Стимол».
Пользуясь набором цветных реакций, представленных в данном пособии,
можно исследовать практически любые овощные культуры: листья капусты,
морковную   стружку,   салат   и   т.   д.   Предметом   исследования   могут   быть
дикорастущие   травы,   например   цикорий,   полынь   и   др.   Надо   просто
приготовить   водную   или   спиртововодную   вытяжку   из   этих   растительных
образцов.
И с с л е д о в а н и е  ф р у к т о в ы х  с о к о в  и  н а п и т к о в
Предыдущий раздел логично подводит нас к идее исследования образцов
фруктовых соков. Ясно, что в соках будет содержаться определенный набор
свободных   аминокислот,   органические   оксикислоты   и,   конечно,   углеводы.
Для наших анализов потребуется не более 5–10 мл сока. Проблемой может
быть   присутствие   в   соке   растительных   пигментов,   особенно   в   томатном,
апельсиновом. Поскольку предложенные реакции достаточно чувствительны,
соки можно разбавлять водой и тем самым снизить фоновую окраску сока. По
нашим   и   литературным   данным,   разные   фруктовые   соки   характеризуются
своим   специфическим   набором   аминокислот,   и   это   обстоятельство   можно
использовать   для   контроля   смесевых   соков.   Конкретный   пример:   в апельсиновом соке высока концентрация иминокислоты пролина, тогда как в
яблочном пролина довольно мало. Следовательно, низкое содержание пролина
в   смешанном   апельсиновояблочном   соке   указывает   на   недостачу
апельсиновой доли.
Здесь мы представим методику качественной реакции на пролин. В основе
методики описанная еще в 1952 году английским автором Чинардом цветная
реакция   пролина   с   нингидрином   в   кислой   безводной   среде.   Оригинальная
методика со времени открытия претерпела многочисленные изменения. Мы
представляем нашу достаточно упрощенную модификацию, которая, на наш
взгляд, вполне выполнима в условиях школы.
О п р е д е л е н и е  п р о л и н а   в   о в о щ н ы х
и   ф р у к т о в ы х  с о к а х
Реагенты:
1. Кислотный раствор нингидрина. Приготовить смесь ортофосфорной и
уксусной кислоты в отношении 1:4; в этой смеси растворить нингидрин до 2,5
%   (нингидрин   растворяется   постепенно   при   небольшом   подогреве).
Поскольку на анализ требуется всего 0,1 мл, можно приготовить всего 10 мл
этого реактива (на 100 анализов). Реактив хорошо хранится.
2. Концентрированная уксусная кислота.
3.   Раствор   пролина   как   стандарт.   Для   качественных   анализов   можно
обойтись и без пролина.
О  п ы  т.  К 0,2–0,3  мл  сока  добавить  1 мл уксусной  кислоты  и 0,1 мл
кислотного раствора нингидрина, перемешать и кипятить в водяной бане в
течение   5–15   минут.   При   наличии   в   пробе   пролина   развивается   красно
коричневое   окрашивание,   чем   больше   в   пробе   пролина,   тем   интенсивнее
окраска.
Замечания   к   методике:  подобную   реакцию   дают   некоторые   другие
аминокислоты, а именно: орнитин, цитруллин, лизин. Однако содержание этих
аминокислот в фруктовых соках ничтожно, поэтому данную реакцию можно
использовать   для   обнаружения   именно   пролина.   Если   к   цветной   пробе
добавить 1–2 мл толуола или бензола и тщательно перемешать, окрашенное
вещество целиком переходит в верхний толуольный слой, опыт становится
более демонстративным. По нашим данным, много пролина в виноградном
соке, а также в виноградных винах и пиве. Но это уже не школьная тематика.
Пролин   (пирролидин   –   карбоновая   кислота)   в   больших   количествах
содержится в растительных протеинах, например, шестая часть аминокислот
злаковых белков – это пролин, больше только доля глутаминовой кислоты.
Исходя из структурной формулы: пролин правильнее отнести к гетероциклическим иминокислотам, так как у
него   нет   аминогруппы.   В   цитоплазме   клетки   пролин   активно   связывает
молекулы   воды,   поддерживая   внутриклеточный   водный   баланс.   Такие
вещества,   способные   удерживать   воду   в   клетке   и   сохранять   нормальный
тургор   ее,   называются   осмопротекторами.   Они   предохраняют   цитоплазму
растительных клеток (и растения в целом) от высыхания. Кроме пролина к
осмопротекторам   относятся   так   называемые   бетаины   (Nметилированные
аминосоединения),   глицерин   и   другие   многоатомные   спирты.   В   условиях
засухи   и   засоленности   почвы   содержание   осмопротекторов   в   растении
заметно возрастает. Увеличение уровня пролина четко прослеживается при
подвяливании и увядании растений. Предпринимались попытки использовать
концентрацию пролина в растениях как показатель засухоустойчивости сорта
(работы биохимиков Австралии). В России этому вопросу много внимания
уделял московский фитохимик Б. Строгонов, изучавший хлопчатник.
Интересным объектом для исследования уровня пролина может служить
обыкновенный сигаретный табак.
А н а л и з  т а б а к а
Попробуем   подкрепить   призывы   к   молодежи   отказаться   от   курения
научными   аргументами.   Как   известно,   в   листьях   табака   содержание
аминосоединений   разной   структуры   (протеины,   свободные   аминокислоты,
никотин и др.) колеблется в зависимости от сорта табака от 1 до 13 % в
расчете на массу сухих листьев. На уроке химии в сигаретном табаке можно
легко определить присутствие аминосоединений нингидриновой реакцией и
параллельно наличие свободного пролина с помощью вышеописанной реакции
Чинарда.
О п ы т. Растереть в ступке 100–200 мг табака из сигареты с 5–10 мл
дистиллированной   воды;   настоять   взвесь   15–20 мин   с   периодическим
энергичным перемешиванием, затем профильтровать через бумажный фильтр
(для   экономии   времени   можно   аккуратно   слить   с   осадка,   но   лучше
профильтровать). К 2 мл желтоватого фильтрата добавить 0,2 мл 0,5 %ного
раствора   нингидрина,   пробу   кипятим   в   водяной   бане   до   появления   сине
фиолетового окрашивания. Из оставшегося объема фильтрата отобрать 0,2– 0,3 мл  и  выполнить   описанную   выше   реакцию   Чинарда:   появление   красно
коричневого   окрашивания   говорит   о   присутствии   в   табачных   листьях
пролина.   Интересно,   что   пути   биосинтеза   пролина   и   никотина   в   табаке
частично совпадают: оба вещества образуются из аминокислоты орнитина.
Естественно, что аминокислоты табака сами по себе никакой опасности
для   человека   не   представляют.   Однако   при   сгорании   табака   при   курении
происходит   окисление   азота   аминокислот   с   образованием   различного   рода
оксидов азота – NO, NO2, N2O5, которые относятся к токсикантам второго
класса опасности. Высший оксид N2O5, соединяясь в легочных альвеолах с
молекулами воды, образует азотную кислоту. Возможно также образование
биоактивных нитрозильных катионов  +NO, которые реагируют с вторичными
аминами (тем же пролином), образуя весьма канцерогенные нитрозоамины. Да
и   сами   по   себе   нитрозилкатионы   и   нитриты   обладают   выраженным
мутагенным   и   канцерогенным   эффектом,   взаимодействуя   с   пуриновыми   и
пиримидиновыми основаниями ДНК и РНК. Таким образом, в дополнение к
общеизвестной   никотиновой   интоксикации   курильщик   получает   еще   целый
букет летучих токсических соединений.
Интересно   проследить   связь   между   качеством   табачного   изделия   и
содержанием в нем аминосоединений. Нам, например, удалось обнаружить,
что табак более дешевых сигарет, как правило, содержит больше аминокислот
и пролина.
А н а л и з  п ч е л и н о г о  м е д а
Как известно, типичный цветочный мед содержит до 75 % моносахаридов
(глюкозу   и   фруктозу)   и   всего   около   1   %   сахарозы.   Высокая   доля
моносахаридов   определяет   выраженные   восстанавливающие   свойства   этого
продукта. Водные растворы меда (1:10) дают реакции «серебряного зеркала»,
Троммера,   Феллинга   и   другие,   хорошо   известные   реакции   из   школьного
учебника. Мы, однако, определим наличие углеводов в растворе меда менее
известной и совсем простой реакцией: к 1–2 мл раствора меда добавить такой
же объем 5 %ного раствора едкого натра, перемешать и поставить в кипящую
водяную   баню;   спустя   3–5   минут   наблюдаем   окрашивание   от   желтого   до
темнокоричневого   в   зависимости   от   концентрации   моносахаридов.   Из
пробирки   ощущается   приятный   запах   карамели   (жженого   сахара),
усиливающийся   при   нейтрализации   пробы   кислотой.   Подобно   другим
альдегидам   и   кетонам   моносахариды   легко   осмоляются   при   нагревании   в
щелочной   среде.   Наверное,   это   самая   простая   проба   на   присутствие
углеводов, легко выполнимая у нас на кухне.
Углеводы  –  основной,  но  не   единственный   компонент  цветочного  меда.
Полезность   этого   пищевого   продукта   связана   с   наличием   азотсодержащих соединений (до 0,5 %). Среди последних с помощью нингидриновой реакции
находим   аминокислоты.   Предложенными   выше   цветными   реакциями   на
отдельные аминокислоты можно открыть в образцах меда гистидин, аргинин,
тирозин. И практически всегда обнаруживается пролин. Аминокислоты меда
происходят из цветочного нектара, и их содержание значительно колеблется в
зависимости от сорта меда. Можно порекомендовать выявление отдельных
«медовых»  аминокислот   с  помощью  восходящей  бумажной   хроматографии
(техника биохимии описана ранее).
А н а л и з  п р о д у к т о в   ж и в о т н о в о д с т в а
Принципы   химического   анализа   на   школьном   уроке   –   простота   и
наглядность. На базе описанных ранее методик предлагается обнаружить в
мясных   продуктах   некоторые   азотистые   соединения.   Речь   идет   о   так
называемых экстрактивных веществах, т. е. веществах, легко экстрагируемых
из   мясного   продукта   во   время   варки   мяса.   Эти   вещества   во   многом
ответственны за вкус и запах мясного отвара или, другими словами, бульона,
супа.
Самый простой вариант подготовки пробы: мясную сосиску (сардельку)
отвариваем в двойном объеме воды (например, 100 г + 200 мл воды) в течение
нескольких минут. Далее саму сосиску можно съесть, а мутноватый отвар
подвергаем анализу.
1. Реакция на мочевину. Мочевина обнаруживается в отваре практически
всегда, поскольку в мышечной ткани ее концентрация составляет от 0,4 до 1,4
г на 1 кг.
2.   Обнаружение   креатина.   Содержание   креатина   и   креатинфосфата   в
мышцах   доходит   до   0,5   %.   Столь   высокая   концентрация   без   проблем
обнаруживается в отваре с помощью пикратного метода Яффе.
3.   Обнаружение   карнозина   и   других   гистидинсодержащих   дипептидов.
Для   мышечной   ткани   характерны   реакции   биосинтеза   так   называемых
гистидинсодержащих дипептидов (ГСД). К ним относятся карнозин, офидин,
ансерин. Структурные формулы приводятся ниже: Из   приведенных   формул   видно,   что   карнозин,   офидин,   ансерин
представляют собой своеобразные дипептиды, состоящие из гистидина или
метилгистидина и бетааланина.
Заслуга   открытия   карнозина   принадлежит   русскому   биохимику
В. С. Гулевичу, который в 1900 году выделил из водного экстракта мясного
фарша   соединение   следующего   состава   С9Н14N4O3.  Структура   карнозина,  а
именно так Гулевич назвал выделенное соединение (от carnis – мясо), была
установлена к 1918 году. Другие гистидинсодержащие дипептиды открыты
позже: ансерин в 1929 году в мясе птицы (anser – гусь), а офидин в 1939 году в
мышечной ткани змей и китов.
Позже обнаружилось, что гистидинсодержащие дипептиды в значительных
количествах   содержатся   в   головном   мозге,   но   всетаки   это   специфически
мышечные   (мясные)   компоненты.   Открыт   еще   целый   ряд   ГСД,   например
карцинин (в мясе крабов, моллюсков), гомокарнозин и другие. К настоящему
времени хорошо изучены пути биосинтеза и распада карнозина и других ГСД.
Что касается биологической  роли гистидинсодержащих дипептидов,  то
можно выделить следующие моменты:
1.  Будучи   органическими   основаниями,   они   участвуют   в   нейтрализации
образующихся в клетке кислых продуктов, например молочной кислоты.
2.   Карнозин   и   его   аналоги   являются   естественными   гидрофильными
(водорастворимыми)   антиоксидантами,   предохраняя   структуры   клетки   от
избыточного окисления активными формами кислорода.
3.   Не   исключено,   что   эти   соединения   выполняют   функцию   резервных
источников гистидина для биосинтеза мышечных белков; если сопоставить
концентрацию карнозина и свободного гистидина в мышцах млекопитающих, то их отношение составит примерно 80:1. Вероятно, по мере расходования
свободного гистидина в клетке идет его пополнение из карнозинового фонда,
тем более что другой продукт гидролиза карнозина бетааланин необходим
для   синтеза   пантотеновой   кислоты   и   важного   кофермента   ацилирования
коэнзима А.
Все   это   достаточно   существенная   теоретическая   информация,   однако
определение   карнозина   в   мясных   продуктах   имеет,   на   наш   взгляд,   чисто
практическое   значение.   Как   известно,   в   колбасный   фарш   часто   вводят
растительные,  более  дешевые,   добавки   (крахмал,   соевую   муку   и   т.  п.),  не
содержащие карнозина. Поэтому анализ карнозина можно использовать как
один из показателей качества мясного фарша для колбас. Конкретно, если мы
анализируем   некий   сорт   вареной   колбасы   от   двух   производителей   и
обнаруживаем,   что   у   первого   содержание   карнозина   вдвое   ниже,   чем   у
второго, мы вправе предполагать: первый злоупотребляет внесением дешевых
наполнителей.  Что   касается   самого  метода   анализа   карнозина,  то  это   уже
описанная   ранее   диазореакция   Паули,   что   вполне   естественно,   так   как
карнозин дает такую же цветную реакцию, что и гистидин.
Итак,   к   0,5–1,0   мл   отвара   сосиски   добавляем   по   0,1   мл   растворов
сульфаниловой   кислоты,   нитрита   натрия,   карбоната   натрия.   После
добавления   последнего   реактива   в   течение   1   минуты   развивается   ярко
оранжевое  окрашивание,  если в отваре  есть  карнозин. Гистидин   и  тирозин
практически   не   мешают   определению,   поскольку   их   концентрация   на   два
порядка ниже. Реакцию желательно проводить на холоде.
Отметим,   что   в   последние   годы   карнозин   входит   в   моду   как   пищевая
добавка. Появляются патенты на внесение карнозина в напитки и пищевые
продукты. Предпринимаются попытки использовать карнозин и другие ГСД в
качестве   лекарственных   препаратов   (глазные   капли   Севитин   для   лечения
катаракты, противоожоговая мазь и др.).
В   широком   смысле   к   экстрактивным   веществам   мышц   относят   также
мононуклеотиды (АТФ, АДФ, АМФ). Заслуживает упоминания и карнитин,
представляющий
производное
аминогидроксимасляной кислоты.
Nметилированное

собой

Несмотря   на   то   что   содержание   карнитина   в   мышцах   относительно
невелико (около 50 мг на 100 г сырой массы), он выполняет важную функцию
транспорта   высших   жирных   кислот   через   внутриклеточные   мембраны.   К
сожалению, мы не можем предложить метод обнаружения карнитина в мясных
продуктах, который можно было бы реализовать в школьных условиях. Тем не
менее   обращаем   на   него   внимание,   поскольку   фармакологи   рекомендуют
препарат   карнитина   детям   с   задержкой   роста,   плохим   аппетитом   и   т.   п.
Карнитин еще называют витамином роста (витамин Вт).
О б н а р у ж е н и е  н и т р и т о в   в   о т в а р е   с о с и с о к На   этикетке   читаем,   что   в   состав   колбасного   изделия   входит
цветообразователь   с   шифром   Е   250.   Кодовые   названия   пищевых   добавок
появились   в   нашей   стране   сравнительно   недавно,   и   основная   масса
потребителей мало знакома с ними и не обращает на них внимания. И все же
что   это   такое   –   цветообразователь   Е   250?   А   это   не   что   иное   как   соль
азотистой кислоты нитрит натрия. Попутно заметим, что Е 249 – это нитрит
калия,   а   Е   251   –   нитрат   натрия.   В   разделе,   посвященном   химии   ротовой
жидкости,   мы   уже   останавливались   на   нитратнитритной   проблеме   и
выяснили,   что   нитриты –   это   довольно   небезопасные   соединения   и   их
токсический   эффект   обусловлен   тем,   что   они   нитрозируют   протеины   и
нуклеиновые   кислоты   живого   организма   и   таким   образом   могут
провоцировать раковые заболевания.
Несмотря   на   это,   в   пищевой   промышленности   нитриты   широко
применяются именно с целью нитрозировать миоглобин мяса. Дело в том, что
этот хромопротеин придает сырому мясу характерный красный (кровяной)
цвет. В результате термической обработки красный миоглобин приобретает
серый цвет вареного мяса. Если же мясной фарш предварительно выдержать в
растворе нитрита натрия, его миоглобин превращается в нитрозомиоглобин,
который придает мясным изделиям цвет красного соленого мяса. Безусловно,
внешний вид розовой колбасы предпочтительнее для потребителя, чем товар
грязносерого цвета. Кроме того, нитриты в комбинации с поваренной солью
обладают   консервирующим   действием.   Однако   надо   иметь   в   виду,   что
токсичность   нитритов   требует   особой   санитарногигиенической
регламентации.   Надо   помнить,   что   избыток   нитритов   в   пище   опасен   для
здоровья.   В   настоящем   пособии   нет   смысла   рассматривать   вопросы
нормирования нитритов в мясных изделиях. Мы просто попробуем выяснить,
есть   ли   в   нашем   сосисочном   отваре   нитриты.   Тем   более   что   сделать   это
весьма несложно.
О п ы т. К 2–3 мл отвара добавить 0,5–1,0 мл реактива Грисса и поставить
на несколько минут в кипящую водяную баню. При наличии в отваре нитритов
появляется   пурпурное   окрашивание   разной   степени   интенсивности.   Если
выполнить   аналогичную   реакцию   с   отваром   обычного   мяса   –   окраски   не
будет.
При добавлении к мясному фаршу нитрата натрия Е 251 последний под
действием бактерий, находящихся на мясе, восстанавливается до нитритов с
тем же технологическим эффектом сохранения цвета мяса.
П р и г о т о в л е н и е  и н д и к а т о р а   и з
к р а с н о к о ч а н н о й  к а п у с т ы
Кислотнощелочные   индикаторы,   или   просто   индикаторы,   широко
используются в аналитической химии, в том числе и в школьной практике. Любой   школьник,   наверное,   скажет,   что   такое   фенолфталеин   или   лакмус
(азолитмин),   или   метилоранж.   Индикаторы   используются   для   определения
реакции   среды   (кислая,   нейтральная,   щелочная),   для   кислотноосновного
титрования   и   т.   п.   Аналитическая   промышленность   выпускает   десятки
разнообразных индикаторов, охватывающих весь диапазон шкалы рH. Но мы
приготовим   индикатор   сами.   Это   очень   просто.   Измельчаем   лист
краснокочанной   капусты   и   растираем   его   в   ступке   с   небольшим   объёмом
спиртоводной   смеси   (1:1)   или   просто   с   водой.   Вытяжка   приобретает
фиолетовый   цвет,   поскольку   из   капустной   ткани   экстрагируется
рубробрассицин.   Это   и   есть   кислотнощелочной   индикатор   растительной
природы. Приготовим 4 пробирки: первая – с раствором кислоты, капустный
индикатор в этой пробирке яркокрасный; вторая – просто с водой – цвет
фиолетовый; третья – со слабым раствором гидрокарбоната натрия – цвет
синий; четвертая – с раствором щелочи, приобретает зелёный цвет. Можно
даже приготовить индикаторную эталонную шкалу, с которой сравнивается
проба с неизвестным рH. Индикатор можно приготовить из кожуры цветного
винограда примерно так же, как из красной капусты. Кстати, изменение цвета
виноградного   сока   и   красного   вина   используется   для   определения   общей
кислотности   продукта   при   титровании   раствором   щелочи.   И   именно
окрашенные растительные соки впервые использовались алхимиками позднего
средневековья для оценки кислотности среды. Например, знаменитый Роберт
Бойль,   который   был   не   только   физиком,   но   и   химиком,   использовал
экстракты лепестков фиалки в качестве кислотнощелочного индикатора.
Как правило, окраска растительных пигментовиндикаторов в щелочной среде
усиливается. В этом легко убедиться, если добавлять щелочь к заварке чая,
цвет раствора становится коричневым. Таким образом возможна
фальсификация крепости заварки чая добавлением, например, чайной соды
(гидрокарбоната натрия).

file_name: анализ пищевых продуктов.docx


extracted_text:
Анкета «Ваша будущая профессия»
Предназначена   для   выявления   представлений   учащихся   о   характере   и
особенностях   выбираемой   профессии.   Данные   анкетирования   позволяют
определить полноту представлений учащихся о будущей профессии, выявить
внутренние противоречия в представлениях о будущей работе.
Выберите один из вариантов  о т в е т о в.
1. Мне хотелось бы работать _________________________________
а) в помещении, б) на открытом воздухе; в) в необычных условиях
(в   горах,   на   море,   в   лесу,   под   землей,   на   высоте);   г)   с   чередованием
условий.
2. Я предпочел (ла) бы, чтобы режим рабочего дня был __________
а) четким, систематическим (начало и конец работы не меняется);
б) посменным; в) свободным, гибким; г) ненормированным.
3. Мне удобнее работать _____________________________________
а) сидя (за столом, пультом); б) стоя (у станка, за прилавком);
в) в разъездах; г) чередуя постоянное место с разъездами.
4. Мне хотелось бы, чтобы работа была связана с ________________
а)   простейшими   механизмами,   ручными   операциями;   б)   машинами   и
механизмами   с   ручным   управлением;   в)   автоматическим   оборудованием,
функциональными орудиями (речь, средства воздействия на эмоции человека,
функциональные возможности организма).
5. Мне хотелось бы всю работу выполнять ______________________
а) в одиночку; б) самостоятельно, но чтобы вокруг были люди;
в) в коллективе; г) с людьми, общаясь и управляя ими.
6. Мне больше нравится работа, в которой необходимы ___________
а)   точные,   мелкие   движения;   б)   координация   движений;   в)   быстрота
движений; г) большая сила.
7. В моей будущей работе важны_______________________________
а) устойчивость внимания; б) наблюдательность; в) память на числа, даты,
события; г) воображение.
8. Успех в моей будущей работе зависит от _____________________
а) технической сообразительности; б) способности мысленно представить
невидимые процессы; в) самоконтроля и самообладания;
г) эмоциональности, умения входить в контакт с другими людьми.
9. Будущую работу мне хотелось бы выполнять __________________
а)   по   заданному   плану;   б)   по   плану,   но   получать   в   процессе   новую
информацию; в) по плану, но иметь возможность изменять его;
г) оперативно.
10. В своей работе лучше отвечать _____________________________ а) только за себя; б) за группу; в) за работу механизмов; г) за ценности.
11. Мне нравится работа, в которой необходимо _________________
а)   распознавать,   определять   свойства   предметов;   б)   преобразовывать,
обрабатывать предметы; в) придумывать новые образцы продукции;
г) оказывать влияние на других людей.
12. Мне нравится ___________________________________________
а)   оценивать   продукцию;   б)   обслуживать   людей;   в)   находить   новые
варианты   решения  задач;   г)   организовывать   производственные   процессы,
деятельность.
13.   Мне   хотелось   бы,   чтобы   будущая   профессия   была   связана   с
_____________________________________________________________
а) руководством людьми; б) воспитанием и обучением детей;
в)   преодолением   стихийных   сил   природы;   г)   комфортным,   спокойным
положением.
14.   Мне   хотелось   бы,   чтобы   результаты   будущей   работы   были
_____________________________________________________________
а)   мало   заметны;   б)   известны   трудовому   коллективу;   в)   известны   всей
стране; г) всемирно признаны.
15. Мне хотелось бы, чтобы от результатов моей работы __________
а)   зависела   только   моя   заработная   плата;   б)   зависело   выполнение
производственного задания; в) зависели жизнь и здоровье людей;
г) зависел мир на Земле.
16. После окончания работы __________________________________
а) хотел(а) бы отключиться от нее, заниматься своими делами;
б) интересно было бы продолжать думать о ней дома; в) продолжала бы ею
заниматься; г) не вспоминал(а) бы о работе до следующего дня.
17. Хотел(а) бы, чтобы работа была ____________________________
а) рядом с домом; б) интересная, а далеко или близко – неважно;
в) не связана с командировками; г) подальше от дома.

file_name: анкета будущая профессия.docx

intro: Предлагаемый методический материал представляет собой  тематическую подборку информации для проведения занятий по предметам по выбору, для элективных курсов, внеклассных мероприятий, предметных декадников по предметам естественнонаучного цикла. Также материал вполне успешно может быть использован для подготовки сообщений, докладов, рефератов по соответствующей теме.

химия

group: Дисциплины

title: Анкета «Ваша будущая профессия»


extracted_text:
Анкета «Проверь свой образ жизни»
Эта   анкета   позволяет   оценить,   насколько   правильный   образ   жизни   вы
ведете.   Все   мы   хотим   быть   здоровыми,   но   многие   не   знают,   как   этого
добиться.   Эксперты   считают   образ   жизни   самым   главным   фактором,
влияющим   на   здоровье.   Цель   данного   теста   показать,   что   следует   делать,
чтобы  быть   здоровее.  Описываемое   поведение  рекомендуется  большинству
людей.
Курение
Если вы вообще не курите, запишите
себе 10 очков переходите к следующему
разделу.
            Всегда   Иногда   Никогда
1. Я избегаю курения
2. Я курю сигареты только с низким
содержанием смол и никотина
Алкоголь и наркотики
1. Я избегаю пить алкогольные напитки
или я делаю в день 2–3 глотка
2. Я избегаю использовать алкоголь
или наркотики как средство разрешения
проблем
3. Я не употребляю алкоголь после
приема лекарств
2
2
4
2
2
4. Я читаю инструкции и следую
предписаниям при употреблении лекарств 2
Привычки в еде
1. Я ежедневно разнообразно питаюсь
2. Я ограничиваю количество жиров
и холестерина
3. Я ограничиваю количество соли
4. Я избегаю есть много продуктов,
содержащих сахар
Физические упражнения
1. Я поддерживаю оптимальный вес,
избегая его увеличения или уменьшения
2. Я совершаю энергичные движения
по 15–20 минут 3 раза в неделю
3. Я делаю упражнения для развития
4
2
2
2
3
3
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0 мускулатуры по 15–20 минут 3 раза в день  2
4. Я использую часть личного времени
для участия в соревнованиях
Стрессовый контроль
1. Мое занятие (учеба/работа)
мне нравится
2. Я легко отдыхаю и свободно
выражаю свои чувства
3. У меня есть близкие, с которыми
я могу поговорить о личных проблемах
4. Я легко преодолеваю стрессовые
ситуации
5. У меня есть хобби
Безопасность
1. В автомобиле я надеваю ремни
безопасности
2. Я не нарушаю правил дорожного
движения
3. Я аккуратен в общении
с электричеством
4. Я аккуратен при обнаружении
незнакомых предметов
5. Я не нарушаю правил пожарной
безопасности
2
2
2
2
2
2
2
2
2
2
2
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
Что означает набранная сумма
9–10   очков.  Блестяще!   Ваши   ответы   показывают,   что   вы   осознаете
важность   правильного  образа   жизни   для   вашего   здоровья,   но,   что   гораздо
важнее, вы еще и используете ваши знания в жизни. Если вы будете так дальше
поступать, то ваше здоровье не подвергнется дальнейшему риску. Похоже, вы
– пример для подражания знакомых и друзей. Теперь обратите внимание на те
результаты, в которых вам следует совершенствоваться.
6–8   очков.  Ваши   привычки   приемлемы,   но   их   можно   улучшить.
Посмотрите   еще   раз   на  вопросы,   где   у   вас   стоят   ответы   «иногда»   или
«никогда».   Что   нужно   сделать,   чтобы  улучшить   ваши   показатели?   Даже
небольшие изменения часто могут улучшить самочувствие.
3–5 очков. Ваше здоровье в опасности! Наверное, вам необходимо больше
знать об опасности, с которой вы сталкиваетесь, и необходимо изменить свое
поведение. Вероятно, вам нужна помощь в том, чтобы достигнуть желаемых
изменений образа жизни и сохранения здоровья. 0–2 очков. Конечно, вы достаточно знаете о своем здоровье и без теста, но
ваши ответы показывают, что подвергаете свое здоровье ненужной опасности.
Возможно, вы не знаете о риске и о том, что с ним связано. Вы можете легко
получить необходимые вам сведения и помощь, если хотите. Следующий шаг
за вами.

file_name: анкета проверь свой образ жизни.docx

title: Анкета «Проверь свой образ жизни»


extracted_text:
П р а к т и ч е с к а я  р а б о т а
АЗОТСОДЕРЖАЩИЕ ОРГАНИЧЕСКИЕ ВЕЩЕСТВА.
БЕЛКИ
Цель работы: исследовать свойства белка.
Т е о р е т и ч е с к о е  о б о с н о в а н и е.
Белки  –   это   природные   полимеры,   имеющие   сложную   структуру.
Первичная   структура   –   это   цепочка,   составленная   из   аминокислотных
остатков (полипептидная цепь). Аминный азот в белках легко распознается
NH .  Закручивание   полипептидной   цепи   в
качественной   реакцией   на   ион
спираль, а далее в глобулу – это вторичная и третичная структуры белка. Эти
структуры удерживаются непрочными водородными связями, которые могут
быть разрушены либо при нагревании – термическая денатурация, либо под
воздействием химических реактивов – химическая денатурация. Белки дают
цветные реакции, которые являются качественными в аналитической химии.
О п ы т  1. Свертывание белков при нагревании.
Небольшое   количество   белка   нагрейте   до   кипения   и   наблюдайте
помутнение   жидкости.   Чем   это   объясняется?   Разбавьте   раствор   водой.
Растворяется ли осадок? Если нет, то почему?
О п ы т  2. Высаливание белков сульфатом аммония.
В пробирку налейте по 1–1,5 мл раствора белка и сернокислого аммония и
встряхните   смесь.   Наблюдается   помутнение   жидкости.   Что   происходит   с
белком?   Разбавьте   смесь   большим   количеством   воды.   Что   произошло   с
осадком? Какой вывод о свойствах белков можно сделать на основании этого
опыта?
О п ы т  3. Осаждение белков солями тяжелых металлов.
В две пробирки налейте по 1–2 мл раствора белка и медленно, по каплям,
при встряхивании приливайте в одну из них насыщенный раствор сернокислой
меди,   а   в   другую –   20%ный   раствор   нитрита   свинца.   Что   наблюдается?
Разбавьте раствор большим количеством воды. Сделайте вывод о действии
тяжелых металлов на белок.
О п ы т  4. Осаждение белков спиртом.
В пробирку налейте 1–1,5 мл раствора белка и долейте 2–3 мл этилового
спирта.   Что   наблюдается?   Растворяется   ли   осадок   в   воде?   Какой   вид
свертывания наблюдается?
О п ы т  5. Цветные реакции на белок.
1) Ксантопротеиновая реакция. Ксантопротеиновая   реакция   указывает   на   наличие   в   белках   остатков
аминокислот,   содержащих   бензольные   ядра,   например   тирозина.   При
взаимодействии   аминокислот   с   азотной   кислотой   образуются
нитросоединения, окрашенные в желтый цвет.
К 1 мл раствора белка добавляют 5–6 капель концентрированной азотной
кислоты   до   появления   белого   осадка   или   мути   от   свернувшегося   белка.
Реакционную   смесь   нагрейте   до   окрашивания   осадка   в   желтый   цвет.   В
процессе гидролиза идет растворение осадка. Охладите смесь и добавьте к
ней   осторожно   по   каплям   концентрированный   раствор   аммиака.   Окраска
переходит в оранжевую.
2) Биуретовая реакция.
С   помощью   биуретовой   реакции   обнаруживают   наличие   пептидных
группировок   в   молекулах   белка.   Белки   с   солями   меди   дают   красно
фиолетовое окрашивание вследствие образования комплексных соединений.
В пробирку налейте по 1–2 мл раствора белка и 20%ного едкого натра.
Затем   прилейте   3–4   капли   разбавленного,   почти   бесцветного   раствора
медного   купороса,   и   содержимое   пробирки   тщательно   перемешайте.   Что
наблюдается? Каков цвет раствора?
О п ы т  6. Обнаружение аминного азота в белках.
В   пробирку   налейте   1   мл   неразбавленного   раствора   белка   и   добавьте
двойной   объем   концентрированной   щелочи.   Смесь   кипятить   2–3 мин.
(Осторожно,   жидкость   может   выброситься!)   При   гидролизе   выделяется
аммиак, который легко обнаруживается по запаху и по посинению влажной
лакмусовой бумажки.
По окончании опытов убрать рабочее место и приступить к оформлению
работы.


extracted_text:
Дополнительный материал на тему:
«БИОХИМИЧЕСКИЙ АНАЛИЗ ПРОИЗВОДНЫХ КОЖИ
(НОГТИ, ВОЛОСЫ)»
Замечено,   что   многие   достаточно   образованные   люди   затрудняются   с
ответом на такой «детский» вопрос: из чего состоят ногти, рога или перья?
Попробуем выполнить ряд опытов, которые позволят ответить на этот вопрос,
установят природу роговой ткани.
О п ы т 1. В пробирку опускаем кусочек отстриженного ногтя и заливаем
его 3–4 мл 4–5 %ного раствора гидроксида натрия, кипятим в водяной бане в
течение   10   минут.   Раствор   становится   мутноватожелтым,   а   ноготь,   как
таковой, исчезает на глазах. Чтобы ускорить процедуру, будем размешивать и
разминать ноготь в пробирке стеклянной палочкой (осторожно, не проткнуть
дно пробирки!). Ноготь растворился. Теперь попробуем выяснить, из чего он
состоит, заранее предполагая, что это скорее всего белок.
Проделаем   прежде   всего   биуретовую   реакцию.   Для   этого   надо   просто
добавить 2–3 капли голубого раствора сульфата меди. Появляется бледно
сиреневое окрашивание, говорящее о наличии пептидных связей
Таким образом мы выясняем, что материал, из которого состоит ноготь,
является протеином. Аналогичным образом можно убедиться, что из белков
состоят волосы, копыта, рога, перья.
Оставшийся щелочной раствор (для биуретовой реакции мы использовали
только   часть   опытной   пробы)   подкисляем   раствором   соляной   или   серной
кислот. При этом наблюдаем значительное помутнение и затем образование
белого осадка, т. е. происходит коагуляция растворенного в щелочи белка.
Кроме   того,   из   пробирки   ощущается   неприятный,   можно   сказать,   даже
тошнотворный   запах   сероводорода.
  Наличие   последнего   можно
дополнительно проверить с помощью бумажки, смоченной раствором ацетата
свинца;   такая   бумажка   при   опускании   в   пробирку   чернеет   (образуется
сульфид свинца).
Добавив   к   пробе   раствор   нингидрина,
  обнаруживаем   наличие
аминосоединений (аминокислоты, пептиды).
Две   последние   реакции   говорят   о   том,   что   ногтевой   белок   не   только
растворяется   в   щелочи,   но   и   частично   при   этом   разрушается   (щелочной
гидролиз).  Реакцией   Сакагуши   обнаруживаем,  что   в  протеине   ногтя   много
аргинина.
О п ы т 2. С другим кусочком ногтя проделываем следующую реакцию:
добавляем несколько капель концентрированной или просто крепкой азотной
кислоты и некоторое время подогреваем в кипящей водяной бане. Ноготь при этом   не   разрушается,   но   окрашивается   в   желтый   цвет.   Окраска   заметно
углубляется   до   краснокоричневой   при   подщелачивании   раствора.   Налицо
известная   ксантопротеиновая   реакция,   характерная   для   ароматических
аминокислот тирозина, фенилаланина, триптофана.
П о д в е д е м  и т о г: ткань ногтя состоит из белка, растворяющегося в
щелочной среде и содержащего такие аминокислоты, как цистин (или цистеин,
или метионин), аргинин, тирозин.
В учебнике по биологической химии можно получить информацию о том,
что   в   состав   роговых   образований   входит   семейство   склеропротеинов,
которые   называются   кератинами   (греч.   keras   –   рог).   Эти   белки   имеют
специфическую   фибриллярную   структуру,   их   вытянутые   молекулы
дополнительно   прошиты   дисульфидными   (S   –   S)   связями.   Такая
канатообразная   структура   обладает   высокой   прочностью   и   одновременно
некоторой   эластичностью.   В   состав   кератинов   различных   роговых
образований   действительно   входит   большое   количество   аргинина   (7,5–
10,9 %),   тирозина   (2,2–4,6   %),   цистина   (8,2–14,4   %);   в   них   также   много
лейцина   и   глютаминной   кислоты,   но   мало   гистидина,   лизина,   триптофана.
Пищеварительные ферменты человека и животных не способны расщеплять
кератины,   однако   это   легко   делают   ферменты   личинок   платяной   моли   и
некоторых других зловредных насекомых, а также ряда бактерий и грибов.
Итак,   с   помощью   аналитической   биохимии   мы   выясняем   подноготную
наших ногтей. Такой вот каламбур.
В современной технологии производства животноводческой продукции
существует важная проблема утилизации кератинов. Подсчитано, что при
годовом производстве около 2 млн тонн белка мяса птицы одновременно
образуется примерно 1,5 млн тонн перьевой массы, которая есть практически
чистый кератин. Есть идеи двойного использования шерсти: сначала для
изготовления одежды, а после ее изнашивания гидролиз шерстяной ткани и
применение гидролизата как кормовой добавки для сельскохозяйственных
животных.

file_name: биоанализ.docx


extracted_text:
Дополнительный материал на тему:
«БИОХИМИЯ РОТОВОЙ ЖИДКОСТИ
(СМЕШАННОЙ СЛЮНЫ).
МЕТАБОЛИТЫ И ФЕРМЕНТЫ СЛЮНЫ»
Слюна,   или,   правильнее,   ротовая   жидкость,   является   очень   доступным
объектом   исследования   на   школьном   уроке   химии.   Получить   ее,   как
говорится, плевое дело. Здоровый молодой человек без особых усилий путем
многократного   сплевывания   за   несколько   минут   наберет   до   4–5   мл   этой
биологической   жидкости.   Но   столько   ротовой   жидкости   нам   и   не
понадобится.
Строго говоря, слюной называется только секрет трех пар слюнных желез
(околоушных,   подчелюстных,   подъязычных).   В   полости   рта   слюна
смешивается   с   секретом   слизистой   оболочки   рта,   слущенными   клетками
эпителия,   а   также   большим   количеством   бактериальных   клеток,   которые
постоянно   обитают   на   слизистой,   деснах,   зубах.   Уровень   бактериальной
обсемененности полости рта значительно варьирует. Подсчитано, что в 1 мл
ротовой жидкости содержится от 40 млн до 5,5 млрд микробных тел. По
насыщенности   микроорганизмами   полость   рта   уступает   только   толстому
кишечнику. Не случайно, ведь первыми микроорганизмами, которые наблюдал
в свой микроскоп голландец Антоний Левенгук в 1683 году, были как раз
микробы   зубного   налета.   В   полости   рта   выявлено   свыше   300   видов
микроорганизмов.   В   основном   это   анаэробы:   стрептококки   и   другие
микрококки,  фузобактерии,  а  также   некоторые   простейшие  грибы.  В 1892
году немецкий микробиолог Миллер опубликовал монографию о микрофлоре
полости рта.
Все   это   наводит   на   мысль   о   том,   что   ротовая   жидкость   может
рассматриваться   как   доступная   модель   микробного   биоценоза.   Если   мы
заинтересовались   жизнью   и   деятельностью   наших   друзей   бактерий,   нам
необязательно   готовить   питательные   среды   и   в   стерильных   условиях
выращивать   микроорганизмы,   что,   конечно,   мало   реально   в   школьных
условиях. Достаточно наплевать в пробирку, и вот уже миллиарды микробов
готовы для изучения. Высокая плотность микробных тел, теплая, влажная и
нейтральная   среда   способствуют   активным   метаболическим   реакциям   в
полости рта, и поэтому же химический состав ротовой жидкости существенно
отличается от состава, например, плазмы крови, лимфы, тканевой жидкости.
В   табл.   1   приводится   химический   состав   типичной   ротовой   жидкости
здорового человека. Химический состав ротовой жидкости
Процент
Компонент
Таблица 1
Сухой остаток
Белки
Аммиак
Мочевина
Аминокислоты
Глюкоза
Неорганические фосфаты
Кальций
Холестерин
Хлориды
Молочная кислота
0,1–1,0
0,08–0,6
0,002–0,01
0,011
0,013
0–0,02
0,007–0,02
0,004–0,01
0,003–0,015
0,04–0,07
0,054
Исследование   образцов   ротовой   жидкости   можно   проводить   по   двум
направлениям:
1. Определение химических компонентов (метаболитов).
2. Анализ активности ферментов как хозяина – человека, так и сожителей –
микробов.
Доступные анализу в школьных условиях компоненты слюны – это аммиак,
мочевина, сумма аминокислот (аминоазот). Эти анализы выполняются так же,
как при исследовании кожных смывов (см. выше), и для анализа потребуется
не более 0,1–0,2 мл слюны, которые разводятся до 1–2 мл водой. С ротовой
жидкостью можно проделать и реакции на отдельные аминокислоты (аргинин,
гистидин, тирозин). Техника этих определений также описана выше.
Как видно из таблицы 1, содержание аммиака в ротовой жидкости в 200–
1000 раз превышает его уровень в крови. Другими словами, здесь ситуация
точно   такая   же,   как   и   на   коже.   Очевидно,   что   в   ротовой   полости   идут
процессы   биосинтеза   аммиака   при   участии   бактериальных   ферментов.   Из
чего, из каких субстратов образуется аммиак слюны, в общем, достаточно
ясно.
Это, вопервых и главных, мочевина, уровень которой поэтому в слюне в
2–3 раза ниже, чем в крови и тканях. Надо принять, что микроорганизмы
ротовой полости содержат гидролизующий мочевину фермент. Кроме того,
аммиак образуется в слюне за счет реакций дезаминирования аминокислот и
их амидов.
А зачем нужен аммиак в ротовой жидкости? По крайней мере, по двум
причинам.   Вопервых,   аммиак   является   пищевым   субстратом   для
разнообразных   и   многочисленных   бактерий   ротовой   полости:   они   его
используют   для   синтеза   собственных   азотистых   соединений,   в   том   числе
белков и нуклеиновых кислот. Вовторых, бактерии ротовой полости активно окисляют   углеводы   с   образованием   органических   кислот,   например,
молочной, угольной, что ведет к нарушению кислотнощелочного баланса, т. е.
закислению   слюны.
  Образующийся   аммиак   частично   нейтрализует
органические кислоты слюны.
То,   что   в   ротовой   жидкости   действительно   активно   гидролизуется
мочевина,   можно   легко   убедиться   (см.   опыты   с   ферментами   ротовой
жидкости).
Создается впечатление, что биохимические процессы в ротовой полости не
отличаются от таковых на кожных покровах. Это не совсем так, поскольку
сообщество   микробов   во   рту   более   разнообразно.   В   частности,   в   ротовой
жидкости   практически   всегда   обнаруживаются   тиоцианаты   (роданиды),   а
также нитриты. Что касается первых, то по литературным данным содержание
их в слюне составляет 30–50 мг на 1 л, у курильщиков – в 3–4 раза выше.
Однако мы не смогли подобрать наглядную реакцию на тиоцианатанионы,
подходящую для условий школьного урока. Известная реакция с хлоридом
железа   оказалась   недостаточно   чувствительной   для   некурящих.   Иное   дело
нитриты. Определение солей азотистой кислоты в ротовой жидкости легко
выполнить на уроке по химии.
О п р е д е л е н и е  н и т р и т о в  в  р о т о в о й  ж и д к о с т и
Для   анализа   потребуется   0,5–1,0   мл   слюны   и   уксуснокислый   раствор
реактива   Грисса.   Реактив   Грисса   –   это   имеющийся   в   продаже   сухой
кремового   цвета   порошок,   с   неприятным   запахом,   представляющий   собой
смесь   сульфаниловой   кислоты   и   1нафтиламина.   Его   можно   много   лет
хранить в темном, хорошо закупоренном флаконе, его раствор в 20 %ной
уксусной   кислоте   также   весьма   устойчив.   Первоначально   реактив   был
предложен   Гриссом   еще   в   1858   году   как   чувствительный   аналитический
реагент на присутствие нитританионов. Немецкий химик Иоганн Петер Грисс
вообще   внес   большой   вклад   в   развитие   химии   красителей   (реакции
диазотирования и азосочетания).
О п ы т. К объему свежесобранной слюны добавляем 1–2 мл воды и 1 мл 1
%ного   раствора   реактива   Грисса,   приготовленного   на   20  %ной   уксусной
кислоте.   Если   нитритов   в   образце   много,   пурпурная   окраска   постепенно
развивается   уже   при   комнатной   температуре,   однако   лучший   результат
получается   при   нагревании   в   горячей   водяной   бане   5–10   минут.
Интенсивность окрашивания пробы от бледнорозового до яркопурпурного в
зависимости от уровня нитритов в пробе. Больше нитритов обнаруживается
после овощных блюд (особенно петрушки, сельдерея и т. п.), овощных соков.
Слюна вегетерианцев, как правило, более богата нитритами. Существует   общее   мнение,   что   овощная   диета   более   полезна.   Но
оказывается, что полезные овощи вызывают повышение нитритов в слюне (и
далее   в   желудочнокишечном   тракте).   Нитриты,   как   известно,   довольно
ядовитые соединения, вполне возможно, что они являются причиной раковых
заболеваний желудка. Что же получается, что и овощи есть вредно?
Дело   в   том,   что   в   овощах   содержится   довольно   много   солей   азотной
кислоты, нитратов. Сами по себе нитраты не столь токсичны, как нитриты. И
человек с пищей и питьем ежедневно получает до 200–300 мг нитратов.
В   таблице   2   представлены   цифры   содержания   солей   азотной   кислоты
(нитратов) в некоторых общеупотребительных овощах, а также в речной воде.
Кстати,   принятая   в   Российской   Федерации   предельно   допустимая
концентрация (ПДК) нитратов в питьевой воде соответствует 50 мг на 1 л.
Содержание нитратов в овощах
Таблица 2
Овощи
Капуста
Огурцы
Томаты
Лук ранний
Лук поздний
Кукуруза
Речная вода
Картофель
Свекла
Перец сладкий
Листовая зелень
Яблоки
Дыни
Мг на 1 кг сырой массы
500–900
100–300
50–100
1200
100–120
100–1700
11–15
250
1400
200
2000
60
90
Содержание нитратов в растительной продукции, как видно из таблицы,
подвержено   существенным   колебаниям.   Это   связано   с   неумеренным
внесением нитратных удобрений. Как правило, высокое содержание нитратов
отмечено   в   ранних   парниковых   овощах   (сравни   в   таблице   лук   ранний   и
поздний).   Однако   вопросы   сельскохозяйственной   химии   –   это   предмет
отдельного разговора.
Интереснее   выяснить,   чем   опасно   употребление   повышенных   количеств
нитратов.   Очевидно,   что   их   опасность   во   многом   связана   с   тем,   что   в
желудочнокишечном   тракте   под   действием   микроорганизмов   происходит
восстановление нитратов до нитритов (и далее до аммиака). Биологическая
подоплека этого процесса состоит в использовании кишечными бактериями
нитратной   формы   азота   для   биосинтеза   собственных   белков,   нуклеиновых
кислот   и   других   важных   азотсодержащих   соединений.  Определенная   часть образующихся нитритов не успевает восстанавливаться дальше до аминного
азота, и поэтому, как описано в опыте 11, мы можем их обнаружить в ротовой
полости   (в   слюне),   где   также   происходит   бактериальное   восстановление
нитратов.
Дальнейшая судьба нитритов  слюны такова: они попадают в кислотную
среду   желудка   и   там   участвуют   в   реакциях   образования   нитрозаминов.
Последние, как известно, получаются при реакции нитритов с вторичными
аминами. Ниже приводится подобная реакция с иминокислотой пролином:
Аналогичным   образом   могут   нитрозироваться   азотистые   основания
нуклеиновых   кислот   (аденин,   гуанин,   тимин   и   др.),   а   это   уже   путь   к
генетическим мутациям и далее к перерождению клеток слизистой желудка и
кишечника, т. е. раковым заболеваниям.
Надо отметить, что ткани высших животных не способны восстанавливать
нитраты  и  обнаружение   гделибо   в  организме   такой  реакции (и  появление
нитритов) однозначно свидетельствует о возникновении здесь бактериального
очага,   об   обсеменении   этой   части   организма   бактериями.   На   этом
медицинском   постулате   основана,   например,   диагностика   почечных
инфекционных заболеваний: обнаружение в свежей моче нитритов говорит о
бактериальной   инфекции   в   мочевыводящих   путях.   Итак,   эти   зловредные
бактерии ко всему прочему еще и отравляют организм нитритами. Не стоит,
однако, так уж клеймить бактерии: они ведь должны расти и размножаться, а
нитраты и нитриты – это, между прочим, их пища. В одной серьезной научной
статье   мне   удалось   натолкнуться   на   шутливые   «законы   микробиологии»,
предложенные   американским   бактериологом   Дэвидом   Перлманом.  Вот   эти
«законы»:
1. Микроб всегда прав; он твой друг и чуткий товарищ.
2. Глупых микробов не бывает.
3. Микробы всесильны и способны на все.
4. Микробы умнее, сообразительнее и энергичнее любого ученогохимика,
инженера.
5. Помоги микробу, и он поможет тебе.
Для микроорганизмов человек – это просто среда обитания, экологическая
ниша, в которой они живут и развиваются. Подсчитано, что человек состоит
примерно из 8 триллионов клеток, и при этом он содержит в своем теле более
100 триллионов бактериальных клеток. Микроб живет на человеке примерно так же, как человек живет на планете Земля. И как необразованный глупый
человек   может   вредить   своей   планете,   так   и   «глупый»   микроб   может
навредить и даже погубить свою среду обитания – организм человека. Правда,
глупых микробов не бывает (см. закон 2).
Ф е р м е н т ы  р о т о в о й  ж и д к о с т и
Можно   было   бы   сразу   перейти   к   изложению   техники   опытов   по
обнаружению   ферментов   в   смешанной   слюне.   Но,   наверное,   сначала   надо
сделать краткий экскурс в область энзимологии, то есть науки о ферментах.
Кстати,   почему   специалистов   по   ферментам   называют   энзимологами,   а   не
ферментологами? Это связано с тем, что законодатели мод в современной
биохимии – американцы и англичане – говорят не ферменты, а энзимы.
Итак,   что   же   такое   ферменты   (энзимы)?   Ферментами   называются
биологические   катализаторы   белковой   природы,   ускоряющие,   точнее
регулирующие,   химические   реакции   в   биологических   системах.   Белковая
природа   ферментов   четко   доказана   еще   в   30е   годы   ХХ века,   когда   были
очищены и получены в кристаллическом виде такие ферменты, как уреаза,
пепсин,   папаин,   рибонуклеаза   и   др.   Поскольку   ферменты   являются
протеинами,   для   них   характерны   типичные   свойства   белков   (протеинов).
Например, при нагревании свыше 50–60о С ферменты теряют свою активность
изза необратимого нарушения нативной структуры белковой молекулы. Это
свойство   ферментов   называют   термолабильностью.   Активность   ферментов
существенно зависит от реакции среды. Кислая и щелочная среда, так же как
температура, изменяет структуру сложной макромолекулы фермента. Отсюда
полная или частичная утрата функции фермента, его активности. Молекула
белкафермента,   естественно,   очень   велика.   Так,   например,   молекулярная
масса фермента уреазы 480 000 дальтонов, а молекулярная масса субстрата
мочевины   только   60   дальтонов;   каталазы   –   250   000,   а   каталазы,   которую
разлагает пероксид водорода, – 34 дальтона. Ясно, что на огромной молекуле
фермента должен быть какойто небольшой участочек, где и разыгрывается
каталитический акт. Эта область фермента называется  активным центром.
Ситуацию с ферментами легко объяснить на таком примере: я печатаю этот
текст   пальцами   правой   руки,   можно   сказать,   что   эта   часть   тела   является
активным центром акта печатания. Или: я просматриваю текст, и глаза есть
активный центр этого действия. Каждому понятно, что для этих действий
нужны и другие части тела – одни пальцы, скажем, без головы ничего бы не
напечатали. Так и с ферментами. Для их функционирования нужна целиком
вся молекула фермента, но само каталитическое действие происходит именно
в   активном   центре.   Такое   положение   позволяет   эффективно   влиять   на
активность   фермента.   Например,   добавив   в   раствор   фермента   небольшое
количество   похожего   на   субстрат   вещества,   мы   можем   заблокировать
(отравить)   активный   центр,   и   фермент   не   сможет   выполнять   свою естественную   функцию.   Такие   вещества   называются   ингибиторами,   и   их
широко применяют, например, в медицинской практике. Можно утверждать,
что   применяемые   лекарства –  в   конечном   счете   ингибиторы   определенных
энзиматических реакций, равно как и яды – это тоже ингибиторы жизненно
важных ферментных систем. Энзимология, по моему глубокому убеждению,
самая   интересная   область   современной   биоорганической   химии   или
молекулярной биологии. В рамках школьной программы можно предложить
ряд   работ   по   энзимологии.   В   нашем   случае   источником   ферментов   будет
опятьтаки ротовая жидкость.
О б н а р у ж е н и е  ф е р м е н т о в  в  р о т о в о й  ж и д к о с т и
Принципиальный   подход   к   обнаружению   того   или   иного   фермента   в
биологической   жидкости   состоит   в   том,   что   предполагаемый   источник
фермента (в нашем случае смешанная слюна) какоето время выдерживается
(инкубируется) с веществом, на которое действует фермент (субстратом), и
затем   в   конце   инкубации   определяется   появление   продукта   реакции   либо
исчезновение (убыль) субстрата. При этом необходимо создать оптимальные
условия   для   проведения   ферментативной   реакции:   подходящая   реакция
среды, оптимальная температура, добавление кофакторов реакции. Простой
пример:   для   определения   активности   фермента   желудочного   сока  пепсина
надо кроме белкового субстрата добавить 0,1 М соляной кислоты, поскольку
этот фермент работает в кислой среде.
В   простом   «школьном»   варианте   используется   экологический   подход:
образец биологической жидкости просто инкубируется с субстратом, как это
происходит в организме, при этом мы не создаём оптимальных тепличных
условий для фермента.
По происхождению ферменты ротовой жидкости можно подразделить на
«человеческие»   и   бактериальные.   К   первым   можно   отнести,   например,
амилазу (раньше она называлась птиалином), лизоцим или мурамидазу и др.
Амилаза   слюны   синтезируется   непосредственно   в   слюнных   железах   и
является идеальным объектом для демонстрации ферментативной активности
в школьном и вузовском курсе. Процедура анализа очень проста. К 0,2–0,5 мл
слюны   добавить   1   мл   разбавленного   раствора   крахмала.   После   15–20
минутной инкубации уже можно установить, что в слюне есть амилаза. Дело в
том,   что   амилаза   гидролизует   крахмал   согласно   следующему   уравнению
реакции:
(С6Н10О5)n + nН2О = nС6Н12О6
Сам крахмал, как хорошо известно, дает очень чувствительную реакцию с
йодом – синее окрашивание. Под действием амилазы крахмал расщепляется
до   олигосахаридов,   которые,   естественно,   не   дают   реакции   с   йодом.
Амилазная активность в слюне довольно высокая, и этот опыт получается без проблем. Единственное замечание: концентрация крахмала должна быть очень
низкая.  Если   крахмала   будет   много,  он   не   успеет   весь   гидролизоваться   и
синее окрашивание после инкубации сохранится. Чтобы не попасть впросак,
учителю   надо   проделать   опыт   заранее,   подобрав   время   инкубации   и
концентрацию крахмала.
С   амилазой   можно   выполнить   целый   ряд   опытов   по   изучению   свойств
ферментов. Например, посмотреть, как влияет температура и реакция среды
на   скорость   гидролиза   крахмала   амилазой.   Или:   тормозят   ли   активность
фермента соли тяжелых металлов.
Непонятна,   между   прочим,   функция   слюнной   амилазы,   ведь   в   ротовой
полости пища не задерживается и процесс переваривания крахмала пищевых
продуктов происходит в тонком кишечнике. Зачем же тогда амилаза в слюне?
Ф е р м е н т ы  м и к р о о р г а н и з м о в   р о т о в о й   ж и д к о с т и
Бактериальные   ферменты   в   ротовой   полости   разнообразны   и
многочисленны.
О п ы т. ОПРЕДЕЛЕНИЕ БАКТЕРИАЛЬНОЙ УРЕАЗЫ
Ротовая   жидкость   инкубируется   с   1–3   %ным   раствором   мочевины.   В
пробу добавлено несколько капель универсального индикатора. Результат: за
счет   образования   аммиака   проба   подщелачивается   и   цвет   индикатора
изменяется   от   желтозеленого   до   синего.   Можно   использовать   другие
индикаторы   с   зоной   перехода   окраски   в   нейтральнослабощелочном
диапазоне.   Реакцию   можно   наблюдать   в   динамике   через   определенные
интервалы   инкубации.   Физиологический   смысл   бактериальной   уреазы   –   в
использовании   мочевины   слюны   человека   как   питательного   субстрата   для
микробов.   Аналогичный   процесс   интенсивно   происходит   в   толстом
кишечнике и в рубце жвачных животных. Кроме того образующийся аммиак
(щелочной продукт) участвует в нейтрализации органических кислот ротовой
жидкости.   Последние   накапливаются   в   ротовой   полости   в   результате
действия бактериальных ферментов брожения углеводов. Об этом следующий
опыт.
О п ы т. ОПРЕДЕЛЕНИЕ ГЛИКОЛИТИЧЕСКОЙ АКТИВНОСТИ
СЛЮНЫ
К ротовой жидкости добавляем раствор какоголибо из сахаров (глюкоза,
фруктоза,   сахароза,   лактоза   и   др.)   и   несколько   капель   универсального
индикатора. После часовой инкубации (а возможно, и раньше) наблюдается
постепенное изменение окраски индикатора до желтого и далее до желто
оранжевого.   Можно   использовать   другие   индикаторы,   у   которых   зона
перехода   в   слабокислой   среде.   Повидимому,   основной   органической кислотой,   образующейся   из   углеводов   в   ротовой   жидкости,   является
молочная   кислота.   Можно   попробовать   ее   обнаружить   после   инкубации
слюны   с   углеводами   реакцией   с   хлоридом   железа.   Инкубируя   ротовую
жидкость   с   различными   углеводами,   можно   установить,   что   они
расщепляются с разной скоростью. Наиболее быстро расщепляется глюкоза и,
таким образом, закисляет ротовую полость. А похожая на глюкозу пентоза
под названием ксилоза практически не метаболизируется бактериями. В связи
с   этим   нетрудно   догадаться,   почему   в   «Орбит»   добавляют   ксилозу   или
ксилит, но не глюкозу или сахарозу.
О п ы т. ОПРЕДЕЛЕНИЕ АРГИНАЗЫ
К   объему   ротовой   жидкости   добавить   раствор   аминокислоты   аргинина.
Происходит   следующая   ферментативная   реакция   (фермент   называется
аргиназой):
аргинин + вода = орнитин + мочевина.
То, что в ротовой жидкости есть аргиназа, определяем по увеличению в
пробе продукта реакции мочевины. Для наглядности следует поставить пробу
с   ротовой   жидкостью   без   аргинина,   так   как   в   слюне   есть   небольшое
количество   фоновой   мочевины.   Физиологическое   значение   этого   фермента
состоит в использовании бактериями белкового аргинина как энергетического
субстрата.  Кроме   того,  из   образующегося  орнитина  синтезируются   важные
полиамины, которых в слюне значительно больше, чем в крови.
О п ы т. ОПРЕДЕЛЕНИЕ НИТРАТРЕДУКТАЗЫ
К   0,1–0,2   мл   ротовой   жидкости   добавляем   несколько   капель   0,01 М
раствора нитрата натрия (годятся также соли калия, аммония, магния). Проба
инкубируется 20–30 минут в водяной бане при температуре около 40о С. Для
сравнения   ставится   еще   одна   проба   с   тем   же   количеством   слюны,   но   без
нитрата. Как показано выше, в ротовой жидкости и так присутствует немного
нитрита. А ведь именно по нарастанию концентрации нитрита мы судим о
наличии в слюне бактериальной нитратредуктазы. Определяем появление (или
нарастание) нитрита с помощью уже описанной цветной диазореакции Грисса:
в пробе с нитратом будет яркопурпурное окрашивание, а в пробе без нитрата
– бледнорозовое или вообще проба будет бесцветной. Определение фермента
нитратредуктазы в ротовой жидкости по указанной прописи получается очень
хорошо и надежно. Высокая активность этого фермента говорит о том, что в
ротовой   полости   содержится   много   микроорганизмов,   восстанавливающих
минеральные   нитраты   пищевых   овощей.   Низкая   активность   наблюдается
после   чистки   зубов   пастой,   после   полоскания   рта   дезинфицирующими
растворами.   Соли   тяжелых   металлов,   в   том   числе   и   нитраты,   а   также антибиотики,   как   и   следовало   ожидать,   резко   тормозят   активность
бактериальной нитратредуктазы. Достаточно легко выполнить в классе такую
почти экспериментальную работу: собрать образцы слюны у 9–10 школьников,
проинкубировать их равные объемы с нитратом натрия одинаковое время и
провести   реакцию   Грисса.   Различие   в   интенсивности   окрашивания   проб
позволяет   оценить   количество   бактерий   в   ротовой   полости   разных
школьников, так сказать, гигиенический статус рта школьника.
И с с л е д о в а н и е  н и т р и т р е д у к т а з ы
Образующиеся   в   ходе   предыдущей   реакции   нитриты   подвергаются
дальнейшему   восстановлению,   хотя   и   с   меньшей   скоростью.   Это
восстановление   идет   через   ряд   промежуточных   продуктов,   но   в   конечном
счете   образуется   аммиак.   Следовательно,   если   мы   будем   инкубировать
ротовую жидкость с раствором нитрита натрия (не путать с нитратом), то
получим   в   опытной   пробе   прирост   аммиака.   Однако   можно   обнаружить
активность нитритредуктазы и по убыли нитрита. Надо только использовать
низкую концентрацию субстрата, чтобы его убыль была заметна.
Здесь уместно сделать одно принципиальное замечание. Есть два подхода к
исследованию   активности   любого   фермента.   Ее   определяют   по   убыли
субстрата либо по прибыли продукта реакции. Можно сказать, что эти два
подхода зеркально противоположны. Действительно, если в ходе химической
реакции израсходовалось, допустим, 2 ммоля субстрата, то очевидно, что в
реакционной системе появится 2 ммоля продукта. Выбор, каким способом
определять активность фермента, зависит от методических возможностей и
умения   исследователя.   Но,   в   принципе,   более   демонстративным   является
способ   по   определению   прироста   продукта   реакции,   поскольку   в   нулевой
момент   реакции   продукт   вообще   отсутствует,   и   его   появление   и   затем
нарастание очень наглядно.
Процесс восстановления нитратов в ротовой полости можно выразить в
виде следующей последовательности реакций:
NO3
–    NO2
–       NH2OH    NH3
О п р е д е л е н и е  п р о т е о л и т и ч е с к о й  а к т и в н о с т и
Когда   образец   ротовой   жидкости   инкубируется   в   теплой   бане,   в   нем
обнаруживается нарастание аминоазота, увеличение окраски с нингидрином.
Если   же   в   пробирку   добавить   препарат   белка   (альбумин,   желатин   и   др.),
прирост   аминоазота   ускорится   и   может   быть   выявлен   нингидриновой
реакцией   после   40–60минутной   инкубации.   Желательно   использовать
ротовую   жидкость   натощак.   Физиологический   смысл   этого   процесса достаточно   ясен.   Микробы   гидролизуют   белок   слюны   хозяина   или
добавленный специально белок как энергетический субстрат, а главное, для
получения аминокислот, из которых они построят белки своих собственных
клеток. Процессы протеолиза в ротовой полости, очевидно, усиливаются при
воспалении. А в основе кариеса зубов лежит реакция гидролиза зубного белка
(оссеоколлагена), и отсюда – разрушение структуры зубной ткани.
О п р е д е л е н и е  д е к а р б о к с и л а з ы  а м и н о к и с л о т ы
о р н и т и н а
Бактерии   довольно   активно   лишают   различные   аминокислоты   их
карбоксильной   группы   с  образованием   соответствующих   аминов.   Бактерии
ротовой полости активно декарбоксилируют аминокислоту орнитин согласно
реакции:
орнитин     путресцин + СО2
Для   анализа   кроме   слюны   нужно   раздобыть   субстрат   Lорнитин   (что
достаточно   проблематично).   Если   же   у   вас   есть   искомая   аминокислота,
проинкубируйте ее с образцом слюны в течение 1–2 часов и затем в опытной
пробе   определите   убыль   субстрата,   т.   е.   орнитина,   модифицированной
нингидриновой реакцией Чинарда (процедура реакции будет описана ниже).
Интересно,   что   в   ротовой   жидкости   содержится   относительно   высокий
уровень   путресцина.
  Этот   факт   установил   индийский   биохимик
Гопалакришна.   Путресцин,   как   и   другой   диамин   кадаверин,   обладает
неприятным гнилостным запахом (напоминающим запах изо рта). Но с другой
стороны,   путресцин,   а   также   образующиеся   из   него   спермидин   и   спермин
играют   важную   роль   в   формировании   и   функционировании   макромолекул
нуклеиновых   кислот.   А   последние   участвуют   в   передаче   генетической
информации и биосинтезе белков в клетке.
К а т а л а з а  р о т о в о й  ж и д к о с т и
К образцу слюны добавляется 1–3 %ный раствор перекиси водорода, и
проба инкубируется в теплой водяной бане. Параллельно ставится пробирка
со слюной без перекиси (контрольная проба). В опытной пробирке замечается
образование пузырьков кислорода согласно реакции:
Н2О2  Н2О + О2
Среди   других   ферментов   ротовой   жидкости   кислая   и   щелочная
фосфатазы,   которые   можно   определить   с   помощью   специальных   наборов
(методики   достаточно   просты).  Нам   удается   определить   также   активность
гликозидаз.   В   конечном   счете   может   создаться   впечатление,   что   в   слюне можно определить почти все ферменты, что недалеко от истины (поскольку
слишком разнообразен микробный состав этого секрета).
Количественное определение ферментов ротовой жидкости имеет важное
значение в стоматологии. Ясно, что при воспалении в полости рта изменяется
состав микробной флоры и соответственно активность определенных энзимов.
Предположим,   что   в   слюне   увеличивается   количество   ныне   модных
геликобактерий, обладающих высокой уреазной активностью. Тогда скорость
гидролиза мочевины в такой «патологической» слюне заметно возрастет, что
можно выявить выше описанными методами.
Представленные   материалы   показывают,
  насколько   разнообразен
химический   состав   живого   организма,   а   ведь   мы   проанализировали   лишь
толику   веществ,   экскретирующихся   кожей,   содержащихся   в   ротовой
жидкости.  Например,  мы   совершенно   не   затронули   аналитические   реакции
большой   группы   жироподобных   веществ   (липидов),   хотя   на   коже   можно
достоверно   обнаружить
  присутствие   и   нейтральных   жиров
(триацилглицеринов), и свободных жирных кислот, и холестерина, и других
липидов.   Не   зря   же   существует   выражение   «жирная   кожа».   Липиды
секретируются,   главным   образом,   сальными   железами   кожи   и   тонкой
пленочкой   покрывают   практически   всю   поверхность   тела,   особенно   много
липидов   экскретируется   в   волосистой   части   головы.   Липидная   пленка
выполняет   важную   функцию   гидрофобной
(водоотталкивающей)
биологической смазки, предохраняющей кожу от избыточного высушивания и
слущивания рогового слоя. Кроме того, липидная смазка предохраняет белки
кожных   покровов   (коллагены,   кератины   и   др.)   от   излишнего   контакта   с
влажной водной средой, что привело бы к частичному набуханию этих белков
и нарушению их естественной (нативной) структуры.
Легко   заметить,  что   кожа   плохо   смачивается   водой   (капли   воды   с   нее
скатываются).   Смачивание   кожи   заметно   улучшается   после   воздействия
растворов поверхностноактивных веществ, а попросту после мытья с мылом
и   шампунями.   Возникает   санитарногигиенический   вопрос:   как   часто   надо
мыться? Очевидно, на этот вопрос нет однозначного ответа. Очень часто –
будет   повреждаться   защитная   липидная   пленка,   очень   редко   –   на   коже
увеличивается   концентрация   экскретируемых   веществ,   выполняющих
функцию   питательных   веществ   (нутриентов)   для   кожной   микрофлоры,   и
далее   как   следствие   –   размножение   микроорганизмов,   в   том   числе   и
патогенных. Повидимому, истина, как всегда, посередине.

file_name: биохимия.docx


extracted_text:
МЕТОДИЧЕСКИЙ МАТЕРИАЛ ДЛЯ ПРОВЕДЕНИЯ
ЭКСПЕРИМЕНТОВ ПО ВЛИЯНИЮ ФАКТОРОВ НА СКОРОСТЬ
ХИМИЧЕСКОЙ РЕАКЦИИ:
1. Влияние природы реагирующих веществ
на скорость химической реакции
Для   проведения   опыта   укрепить   в   штативе   пробирку   с   газоотводной
трубкой,   свободный   конец   которой   опустить   в   кристаллизатор   с   водой.
Другую пробирку, заполненную водой, перевернуть вверх дном и опустить в
кристаллизатор с водой. Пробирку с газоотводной трубкой заполнить на 2/3
объема 0,1 н. раствором уксусной кислоты, затем внести туда 23 гранулы
цинка,   предварительно   промытые   водой   и   высушенные   фильтровальной
бумагой. Закрыть пробирку пробкой с газоотводной трубкой, конец которой
под   водой   подвести   под   отверстие   пробирки   с   водой   (следить,   чтобы   в
пробирку не проник воздух и чтобы из нее не вылилась вода). С помощью
секундомера или метронома отметить время заполнения пробирки газом.
По окончании опыта вылить уксусную кислоту из пробирки, промыть цинк,
высушить   его   фильтровальной   бумагой.   Провести   опыт   снова,   заполнив
пробирку на 2/3 объема 0,1 н. раствором соляной кислоты.
Сравнить скорости взаимодействия с цинком соляной и уксусной кислот
одинаковой концентрации и дать объяснение наблюдаемым явлениям.
2. Зависимость скорости реакции
от концентрации реагирующих веществ
а) К 1 н. раствора тиосульфата натрия Nа2S2O3 прилить 2 н. раствор серной
кислоты   Н2SО4.   Наблюдать   помутнение   раствора,   которое   вызвано
взаимодействием   тиосульфата   натрия   и   серной   кислоты   с   выделением
свободной серы:
Na2S2O3 + H2SО4  Na2SO4 + SО2 + H2O + S
Время,   которое   проходит   от   начала   реакции   до   заметного   помутнения
раствора, характеризует скорость реакции.
б) В три большие пронумерованные пробирки налить разбавленный (1 :
200) раствор тиосульфата натрия Na2S2O3: в первую – 5 мл, во вторую – 10 мл,
в третью – 15 мл. К содержимому первой пробирки добавить затем 10 мл
воды,   а   второй   –   5   мл   воды.   В   три   другие   пробирки   налить   по   5   мл
разбавленной   (1   :   200)   серной   кислоты.   В   каждую   пробирку   с   раствором
Na2S2O3  прилить   при   помешивании   по   5   мл   приготовленной   H2SO4  и определить время с момента добавления кислоты до помутнения раствора в
каждой пробирке.
Записать результаты по следующей форме:
№
про
бир
ки
Объем
раствора
Na2S2O3,
мл
Объем
Н2О, мл
Объем
раство
ра
Н2SО4
Общий
объем
раствора,
мл
Условная
концент
рация
Na2S2O3
Время
протека
ния рции
до
появления
мути, t
Скорость
рции
в
условных
единицах
υ = 1/t
10
5
–
5
5
5
20
20
20
5
10
15
1С
2С
3С
1
2
3
Те   же   результаты   изобразить   графически,   отложив   на   оси   абсцисс
условные концентрации Na2S2O3, а на оси ординат – скорости реакции υ = 1/t.
Сделать   вывод   о   зависимости   скорости   реакции   от   концентрации
реагирующих веществ. Согласуются ли ваши наблюдения с законом действия
масс?
3. Зависимость скорости реакции от температуры
Для опыта взять разбавленные (1 : 200) растворы Na2S2О3 и Н2SО4.
Налить   в   три   большие   пронумерованные   пробирки   по   10   мл   раствора
Na2S2O3,   в   другие   три   пробирки   –   по   10   мл   раствора   серной   кислоты   и
разделить  их   на  три   пары:   по   пробирке  с  раствором  Na2S2O3  и  с  Н2SО4  в
каждой паре.
Отметить   температуру   воздуха   в   лаборатории,   слить   вместе   растворы
первых двух пробирок, встряхнуть и определить время с момента добавления
кислоты до помутнения раствора.
Две другие пробирки поместить в химический стакан с водой и нагреть
воду до температуры на 10 °С выше комнатной. За температурой следить по
термометру, опущенному в воду. Слить содержимое пробирок, встряхнуть и
отметить время от слива до появления мути.
Повторить опыт с оставшимися двумя пробирками, нагрев их в том же
стакане с водой до температуры на 20 °С выше комнатной.
Записать результаты по следующей форме:
№ про
бирки
Объем
раствора
Na2S2O3, мл
Объем
раствора
Н2SО4
Темпера
тура, °С
Время
появления
мути, t
1
2
10
10
10
10
t °С
t °С + 10
Скорость рции
в условных
единицах
υ = 1/t 3
10
10
t °С + 20
Составить график, иллюстрирующий зависимость скорости реакции от
температуры для данного опыта. Для этого на оси абсцисс нанести в
определенном масштабе значения температуры опытов, а на оси ординат –
величины скорости реакции υ= 1/t. Сделать вывод о зависимости скорости
химической реакции от температуры. Какие значения принимает
температурный коэффициент для большинства химических реакций?

file_name: влияние условий на скорость реакции.docx


extracted_text:
П р а к т и ч е с к а я  р а б о т а
ВОДОРОДНЫЕ СОЕДИНЕНИЯ НЕМЕТАЛЛОВ
Теоретические сведения.
С неметаллами водород образует летучие соединения. В обычных условиях
это газы или летучие жидкости.
усиление кислотных свойств, увеличение окислительной
способности   (увеличение   количества   валентных
электронов)
усиление   кислотных   свойств,
окислительной
увеличение
способности
(увеличение
радиуса атома)

Водородные   соединения   наиболее   типичных   неметаллов   (HC ,   HBr,   HI,
H2S)   в   водных   растворах   диссоциируют   с   образованием   ионов   водорода,
2ˉ) обладают
то есть являются кислотами. Анионы этих кислот (C ˉ, Brˉ, Iˉ, S
восстановительными свойствами.
ℓ
ℓ
Выполнение работы.
О п ы т  1. Получение и свойства хлороводорода.
В   пробирку   насыпать   немного   поваренной   соли   и   прилить   2–3 мл
концентрированной серной кислоты. Быстро закрыть пробирку пробкой, через
которую проходит газоотводная трубка. Конец газоотводной трубки опустить
в пробирку до дна, заткнув отверстие пробирки ватой. Смесь слегка нагреть.
Когда из пробирки появится белое облачко, отнять эту пробирку от прибора,
заткнуть ее пальцем и опустить в чашку с водой отверстием вниз.
Отнять палец. Почему поднимается уровень воды в пробирке?
Вновь   закрыть   под   водой   пробирку   пальцем,   вынуть   ее   из   воды   и
исследовать с помощью индикатора образовавшийся в пробирке раствор.
Написать уравнение реакции получения хлороводорода.
О п ы т   2. Получение и горение сероводорода (под тягой).
Поместить в пробирку небольшой кусочек сульфида железа и прилить 2–3
мл   разбавленной   соляной   кислоты.   Обратить   внимание   на   запах
выделяющегося   газа.   Закрыть   пробирку   пробкой   с   короткой   вертикальной
газоотводной трубкой. Зажечь выделяющийся газ у конца трубки. Подержать
над пламенем мокрую синюю лакмусовую бумажку. На что указывает ее покраснение?
Внести   в   верхнюю   часть   пламени   фарфоровую   крышечку.   Обратить
внимание на появляющийся налет серы.
Написать   молекулярное   и   ионное   уравнения   получения   сероводорода.
Составить электронные уравнения для процессов окисления и восстановления
при полном и неполном сгорании сероводорода. Написать уравнения реакций.
О п ы т   3. Получение и свойства аммиака.
Поместить в пробирку около 0,5 г смеси одной части хлорида аммония и
двух   частей   гидроксида   кальция.
  Осторожно   понюхать
выделяющийся  газ. Подержать  над  отверстием  пробирки  смоченную  водой
красную лакмусовую бумажку.
  Нагреть.
Что происходит? Написать уравнение реакции.
+.
О п ы т   4. Реакции на ионы C ˉ, Brˉ, Iˉ, NH
1. В три пробирки налить по 2–3 мл: в одну – раствор хлорида натрия, в
другую   –   раствор   бромида   натрия,   в   третью   –   раствор   иодида   натрия.   В
каждую пробирку добавить по нескольку капель раствора нитрата серебра.
ℓ
4
Что наблюдается?
Написать молекулярные и ионные уравнения реакций.
2. В пробирку налить немного раствора соли аммония и прибавить столько
же раствора щелочи. Нагреть содержимое пробирки. В выделяющиеся пары
внести красную лакмусовую бумажку.
Отметить изменение окраски и появление запаха выделяющегося газа.
Написать молекулярное и ионное уравнения реакции.
Сделать вывод о качественной реакции на ион аммония.

file_name: водородные соединения.docx


extracted_text:
Методический материал на тему: «Вычисление массы вещества
или объема газа по известной массе,
количеству вещества, вступающего в реакцию
или полученного в результате реакции»
П р и м е р 1. Вычислите массу воды, образовавшейся при взаимодействии
гидроксида калия массой 280 г с избытком раствора серной кислоты.
Решение.
С п о с о б 1 (по числу моль).
5 моль
2 КОН + H2SO4 = K2SO4 + 2H2O
2 моль
1. Вычислим количество вещества КОН:
2 моль
x моль
(m
(M
)
KOH
KOH
)

280
56
ν (КОН) =
2. По уравнению реакции устанавливаем соотношение между количеством
= 5 (моль).
вещества КОН и Н2О:
ν (КОН) : ν (Н2О) = 2 : 2 = 1 : 1.
Следовательно: ν (КОН) = ν (Н2О) = 5 моль.
3. Рассчитываем массу воды:
m (H2O) = ν (Н2О) ∙ М (Н2О) = 5 ∙ 18 = 90 (г).
С п о с о б  2 (по массам веществ).
280 г
2КОН + H2SO4 = K2SO4 + 2(Н2О)
М = 56 г/моль
m = 112 г
Из   уравнения   реакции   следует,   что   для   получения   воды   массой   36 г
М = 18 г/моль
m = 36 г
x г
требуется 112 г гидроксида калия:
112 г КОН – – – 36 г Н2О
280 г КОН – – – x г Н2О
П   р   и   м   е   р     2.   Определите,   какой   объем   кислорода   расходуется   на
окисление глюкозы массой 3,6 г.
Решение.
С п о с о б 1.
0,02 моль
С6Н12О6 + 6О2 = 6СО2 + 6Н2О
1 моль
1. Определяем количество вещества С6Н12О6:
6 моль
x моль = 0,02 (моль).
6,3
ν (С6Н12О6) =  180
2. Из уравнения реакции следует, что
ν (С6Н12О6) : ν (О2) = 1 : 6.
Следовательно: ν (О2) = 0,12 (моль).
3. Вычисляем V (О2):
V (О2) = ν (О2) ∙ VM = 0,12 ∙ 22,4 = 2,688 (л).
С п о с о б  2.
3,6 г
С6Н12О6
М = 180 г/моль VM = 22,4 л/моль
m = 180 г
180 г С6Н12О6 – – – 134,4 л О2
3,6 г С6Н12О6 – – – x л О2
П р и м е р  3. Вычислите, какая масса нитрата серебра вступит в реакцию с
хлоридом   калия,   если   при   этом   образует   осадок   хлорида   серебра   массой
0,716 г.
x л
6О2 = 6СО2 + 6Н2О
V = 134,4 л
+
Решение.
С п о с о б 1.
x моль
AgNO3 + KC  = AgC
1 моль
1. Определяем количество вещества AgC :ℓ
0,005 моль
ℓ
1 моль
ℓ + KNO3
,0
,143
716
321
ℓ
ℓ
= 0,005 (моль).
ν (AgC ) =
2. Из уравнения реакции следует, что
ν (AgNO3) : ν (AgC ) = 1 : 1.
Следовательно:
ν (AgNO3) = ν (AgC ) = 0,005
3. Вычисляем m (AgNO3):
m (AgNO3) = ν (AgNO3) ∙М(AgNO3) = 0,005 ∙ 169,868 = 0,849 (г).
Если исходное вещество или продукт реакции находятся в растворе,
то для решения таких задач определяют массу вещества в растворе по
его массовой доле (см. тему «Растворы»).
 (моль).
ℓ
П   р   и   м   е   р     4.   Определите,   какая   масса   раствора   с   массовой   долей
гидроксида  натрия 4 %,  или 0,04,  расходуется  на нейтрализацию  уксусной
кислоты массой 18 г.
Решение.
С п о с о б  1.
0,3 моль x моль СН3СООН + NaОН = CH3COONa + H2O
1 моль
1. Вычисляем количество вещества СН3СООН:
1 моль
= 0,3 (моль).
18
ν (СН3СООН) =  60
2. Из уравнения реакции следует, что
ν (СН3СООН) : ν (NaОН) = 1 : 1.
Следовательно:
ν (СН3СООН) = ν (NaОН) = 0,3 (моль).
3. Вычисляем m (NaОН): m (NaОН) = 0,3 ∙ 40 = 12 (г).
4. Определяем массу раствора гидроксида натрия:
(m
р(m
NaOH
)
ра)
;
ω (NaОН) =
(m

(
m (рра) =
)
NaOH
NaOH
)

12
04,0

300
(
г).
Реши самостоятельно:
1.   Определите   массу   соли   и   объем   водорода   (н. у.),   образующихся   при
взаимодействии   алюминия   с   соляной   кислотой,   содержащей   хлороводород
количеством вещества 1,5 моль. (66,75 г; 16,8 л.)
2.
  Рассчитайте   объем   сероводорода,
  который   расходуется   на
взаимодействие   с   раствором   объемом   40 мл   с   массовой   долей   гидроксида
натрия 6 % (ρ = 1,044 г/мл) с образованием гидросульфида натрия. (1,4 л.)
3.   Образец   магния,   содержащий   3   ∙   1023  атомов   металла,   обработали
раствором   серной   кислоты.   Определите   количество   вещества   и   массу
образующейся соли. (0,5 моль, 60 г.)
4. Определите объем (н. у.) водорода, необходимого для получения 1,8 ∙
1024 молекул воды. (67,2 л.)
5.   Вычислите   массу   карбоната   кальция,   необходимого   для   получения
оксида кальция массой 224 г. (400 г.)
6. Какая масса сульфата бария образуется при взаимодействии раствора,
содержащего   хлорид   бария   массой   62,4 г,   с   избытком   серной   кислоты?
(69,9 г.)
7. Какой объем водорода (н. у.) потребуется для полного восстановления:
а) 0,2 моль оксида меди (II); б) 20 г оксида меди (II)? (а) 4,48 л; б) 5,6 л.)
8. В избытке соляной кислоты растворили магний массой 6 г и цинк массой
6,5 г. Какой объем водорода выделился при этом (н. у.)? (7,84 л.)
9.   При   пропускании   оксида   углерода   (IV)   через   раствор   гидроксида
кальция   получили   гидрокарбонат кальция массой 8,1 г. Определите объем
оксида  углерода  (IV) (н. у.), который был пропущен через раствор. (2,24 л.) 10. Какой объем раствора с массовой долей серной кислоты 10 % (ρ =
1,07 г/мл)   потребуется   для   нейтрализации   раствора,   содержащего   16 г
гидроксида натрия? (183 мл.)
11.   Для   полной   нейтрализации   раствора   массой   25 г   с   массовой   долей
азотной кислоты 6,3 % потребовался раствор гидроксида калия массой 40 г.
Определите массовую долю щелочи в исходном растворе. (3,5 %.)
12. При пропускания водяного пара над раскаленным углем образуется
водяной газ, состоящий из равных объемов СО и Н2. Какой объем водяного
газа (н. у.) может быть получен из 3 кг угля? (11,2 м3.)
13.   Из   алюминия   массой   81 г   получен   оксид,   который   растворили   в
избытке   щелочи.   Определите   массу   гидроксида   натрия,   вступившего   в
реакцию. (120 г или 360 г в зависимости от продукта реакции.)
14. При  взаимодействии  двухвалентного  металла  массой  10 г с водой
выделился  водород  массой 0,5 г. Определите,  какой взят металл. (Кальций.)
15. При   сжигании   сульфида   двухвалентного   металла   массой 24,25 г
израсходован   кислород   объемом  8,4 л.   Определите,  какой это металл.
(Zn.)
16. При разложении галогенида аммония массой 4,9 г получили аммиак,
объем   которого   при   н. у.   равен   1,12 л.   Определите,   какой   это   галогенид.
(Бромид аммония.)
17.  При   взаимодействии   двухвалентного   металла   массой   13,7 г   с   водой
выделился газ объемом 2,24 л. Определите, какой это металл. К полученному
раствору прилили избыток сульфата натрия. Вычислите количество вещества
и массу осадка. (Ва; 0,1 моль; 23,3 г.)
18.  К  раствору   массой  180 г  с  массовой   долей   уксусной  кислоты 20 %
прибавили карбонат калия. Вычислите количество вещества, объем (н. у.) и
массу выделившегося газа. (0,3 моль; 6,72 л; 13,2 г.)
19. Гидратацией этилена получен этиловый спирт массой 400 г с массовой
долей   этанола   96,5 %.   Определите   объем   и   массу   этилена,   вступившего   в
реакцию. (187,97 м3; 234,96 кг.)
20.   Определите,   какая   масса   брома   была   в   растворе,   если   при   его
взаимодействии   с   фенолом   образовался   трибромфенол   массой   16,55 кг.
(24 кг.)
21. Определите массу уксусного альдегида, образующегося по реакции М.
Г. Кучерова, из ацетилена объемом 89,6 л. (176 г.)
22. Какая масса метана образуется при нагревании со щелочью ацетата натрия
количеством 3 моль? (48 г.)

file_name: вычисление массы.docx