Depletionカラムを用いた高存在量タンパク質の除去プロトコールの要約を以下に示します。詳細については製品使用説明書をご覧ください。ml(カラムにはコネクターキットが付属しています)バッファー調製には高純度の水および試薬を使用してください。μmのフィルターでろ過することをお勧めします。2.7ヒト血漿の希釈は必要ありません。μmのフィルターでろ過します。ml/minにすることをお勧めします。ポンプチューブを結合バッファーで満たします。drop)ポンプチューブに接続します。mlの結合バッファーで洗浄し、保存液である20%エタノールを除去します。mlの結合バッファーを加え平衡化します。ml以上の結合バッファーで洗浄します。サンプル添加・洗浄ステップの素通り画分を回収します。この素通り画分には高存在量タンパク質除去後のサンプルが含まれます。mlの溶出バッファーを用いて溶出し、回収します。カラムを再使用する、または結合したアルブミンとIgGの画分を分析する場合に、ステップ5を行います。タンパク質除去プロセスを手動で(ポンプを使用せずに)行う場合は、専用のルアーコネクターでシリンジをカラムに接続します。ml/minとなるように注意してください。流速が速すぎると、クロマトグラフィー担体の充填状態が損なわれ、背圧が上昇します。一部のタンパク質が、タンパク質間の相互作用または非特異的結合によりアルブンミンやIgGとともに除去されることがあります。したがって、結合画分の分析も検討する必要があります。サンプル間の持ち越しを防ぎ結合能を維持するためには、結合タンパク質を溶出した後に担体を定置洗浄(CIP)することが重要となる場合があります。CIPには70%エタノール水溶液を使用します。分析手法の分離能に対する影響を評価するために、タンパク質除去処理を行っていない血漿と行った血漿を二次元ゲル電気泳動で分析しました(図3.5)。各サンプルをゲル上で平行して泳動し異なる蛍光染料で標識することで、各タンパク質の存在量の差を推定しました。タンパク質除去処理を行っていない血漿とアルブミンやIgGを除去した血漿のタンパク質スポットマップを比較すると、pIまたは分子量がアルブミンおよびIgGに近いタンパク質が確認しやすくなったことがわかります(丸で囲んだ部分)。アルブミンやIgGより存在量が少ないタンパク質の検出数が増加しました(緑色のスポット)。アルブミン/IgG除去血漿(緑色のスポット)と非除去血漿(赤色のスポット)の二次元スポットマップ。黄色のスポットは両方のサンプルから検出されたタンパク質。略号と用語、記号解説お問合せフォーム※よくあるお問合せとご回答(FAQ)は「こちらで»」ご覧いただけます。※ファイルを添付してのお問合せは、お手数ですが「Tech-JP@ge.comまでメールにて」お問合せください。関する情報の収集・分析及び提供、新製品・新サービスの研究開発等並びに市場調査のために利用します。当社は個人情報を業務委託先に預ける場合がありますが、個人情報の取扱いに関する法令、国が定める指針その他の規範に従い、委託先に対する必要かつ適切な監督を行います。9:00〜12:00、13:00〜17:30)にて承ります。