並べて置き、マイクロピペットに入れるパラフィンの量の見当をつける。マジックで印をつけておくと良い。シリンジに流動パラフィンを入れ、カテラン針を取り付ける。カテラン針をマイクロピペットにさし込み(マジックで印を付けた所まで)、見当をつけた量の流動パラフィンを注入する。この時、空気が入らないように注意する。空打ちをして空気を抜いておくことと、パラフィンを注入する際に、針そのものはゆっくりと引いていくのがコツ。マイクロピペットをマイクロディスペンサーに装着する。この時、流動パラフィンが先端からわずかに流出するところを確認しておく(先端まで十分に充填されていること)。マイクロディスペンサーのダイヤルは、時計回りが押出す方向、反時計回りが吸い上げる方向である。マニピュレーター(成茂科学)を実体顕微鏡の右脇に設置し(実験机に鉄板を置いておきマグネットで固定する)、マイクロディスペンサーをこれに装着する。程度の水滴)をつくる。マニピュレーターを使ってマイクロピペットの先端を水滴の中まで押し進める。時計回りに回転させ流動パラフィンが水滴中に出てくることを確認する。次にダイヤルを反時計回りにゆっくりと回転させ、マイクロピペット内に溶液を吸い上げる。マイクロピペットの先が細すぎたり、詰まっていると溶液が上がってこない。この時、針の中に空気がたまってくるようだと吸えていないとわかる。コラゲナーゼ処理後、ろ胞細胞を除いた卵母細胞をテラサキプレートにのせる。個くらいのせると卵が動きにくくやりやすい。wellの縁から少し盛り上がるくらい入れ、卵母細胞を乾かさないように注意する。マニュピュレーターを使って顕微鏡下マイクロピペットの先端を卵母細胞中に入れる。(植物極側(白い方)にインジェクションするのが望ましい。動物極直下には核があり、深く刺し過ぎると卵が死ぬ。テラサキプレートにのせると、たいてい動物極が上にくるため、針の先で少し卵を回転させるなどして、動物極と植物極の境界あたりにインジェクションすることが多い。そこで、刺したら気持ち分、針を引き抜いてからインジェクションするとうまくいく。引き抜きすぎると膜直下の部分にRNAが入ってしまい失敗する。インジェクションする。以下のインジェクション量が好ましい。インジェクション後、数秒待ってから針を引き抜く。インジェクションすると、卵が膨らんでいくようすがよくわかるはずである。うまくわからない時は、時々空打ちをして針がつまっていないことを確認しながら進めていく必要がある。個程度の卵母細胞へのインジェクションが可能である。°Cのインキュベーターに置く。交換し、いきの良い卵母細胞を測定に用いる。