3】ロード用ステージが洗浄装置を備える、請求項2記載の装置。分注装置が生体分子を含む試料の温度を制御するための温度制御装置を備える、請求項2または3記載の装置。洗浄用ヘッドの蓋体とホルダー収容容器により、担体ホルダーの担体収容部を密封状態にしうる、請求項1〜4のいずれか1項記載の装置。反応装置の温度制御装置がホルダー収容容器に設置され、ホルダー収容容器が移動可能である、請求項1〜5のいずれか1項記載の装置。温度制御装置がホルダー収容容器に設置され、ホルダー収容容器が移動することにより担体ホルダーのホルダー収容容器への収容と分離とを実施する、請求項7記載の方法。【請求項9】ロード用ステージが洗浄装置と温度制御装置とを備え、ロード用ステージもしくはロード用ホルダーの少なくとも担体を配置する表面、または担体底部が熱剥離性接着剤からなり、温度制御装置によって剥離する温度未満に変化させることにより担体へ生体分子を固定化して洗浄を行い、さらに温度を剥離温度へ上昇させることにより担体を剥離する、請求項7または8記載の方法。試料に含まれる生体分子が核酸であり、試料を分注する前に、分注装置に備えられた温度制御装置によって温度を変化させることにより、試料中の核酸をPCR反応に付す工程をさらに含む、請求項7〜9のいずれか1項記載の方法。生体分子が核酸であり、担体上に固定化された核酸と試料に含まれる核酸とを相互作用させる工程の少なくとも一部において、温度制御装置によって温度を変化させることによってPCR反応を実施する、請求項7〜10のいずれか1項記載の方法。【請求項12】PCR反応が非対称PCR反応である、請求項10または11記載の方法。担体が、シリコン材料からなる基板表面にカーボン層と化学修飾基とを有する固体支持体である請求項7〜12のいずれか1項記載の方法。タンパク質などの生体分子を担体上に固定化し、それにターゲットとなる生体分子を反応させて両分子の相互作用を研究する方法が広く使われている。【0003】DNAやタンパク質が固定化された担体は、DNAチップやプロテインチップと称され、分注対象物やシリコン等の担体上に1平方センチメートル当たり数百から数十万の密度でDNAやタンパク質を整列させ、固定化することにより作成される。ある生物種の全ての遺伝子配列が解明されている場合、その情報を元にDNAチップを作成することにより、1回のハイブリダイゼーションで試料の全発現情報を得る技術が発展してきた。配列が既知のDNAをアレイ状態に整列・固定化させ、そこに未知の試料を加えてハイブリダイゼーションを起こさせることにより、DNAチップには数千種類の異なるDNAプローブが含まれているために、同時に数千個の遺伝子を同定することができる。基礎研究の分野では、DNAチップは、既知遺伝子の発現パターンと比較することにより新たに発見された遺伝子の機能を推定する研究やシグナル伝達経路における重要物質を特定する研究や新種の遺伝子を同定する研究に利用されている。探索などの高いスループットが要求される分野においても重要な技術となっている。【0004】プロテインチップは、抗体を固定化した抗体アレイを用い、ELISA法をチップ上で行うものが主流である。ELISA法は既に確立された技術であり、高感度分析が可能なためである。役割を担うと期待されている。上記のようなDNAチップまたはプロテインチップを用いた測定作業は、試料数が多いため単純な作業の繰り返しが発生すること、各工程で用いる装置が独立しているため広い設置面積が必要であること、反応温度の管理を行う必要があり反応の進行に長時間を要すること、更に微量な試料を精度高く取り扱うことが必要であること等の理由から、各工程を機械化して自動的に行うことが従来から切望されていた。分析において、多量の担体を迅速かつ効率的に処理するための手段を提供することである。有する複数の担体収容部を有する担体ホルダー、複数の供給孔を有する蓋体を備えた洗浄用ヘッド、ならびに担体収容部を収容可能なホルダー収容容器を備える反応装置を用いて生体分子の相互作用を実施することにより、担体上の生体分子の相互作用、洗浄および乾燥が効率的かつ迅速に実施できることを見いだし、本発明を完成するに至った。【0008】すなわち、本発明は以下の発明を包含する。(3)ロード用ステージが洗浄装置を備える、(2)記載の装置。【0010】(4)分注装置が生体分子を含む試料の温度を制御するための温度制御装置を備える、(2)または(3)記載の装置。(5)洗浄用ヘッドの蓋体とホルダー収容容器により、担体ホルダーの担体収容部を密封状態にしうる、(1)〜(4)のいずれかに記載の装置。【0011】(6)反応装置の温度制御装置がホルダー収容容器に設置され、ホルダー収容容器が移動可能である、(1)〜(5)のいずれかに記載の装置。より試料および担体の温度を変化させ、担体上に固定化された生体分子と試料に含まれる生体分子とを相互作用させる工程、および担体ホルダーとホルダー収容容器とを分離させ、洗浄用ヘッドの供給孔から洗浄液または気体を担体収容部に供給することにより担体を洗浄または乾燥する工程を含む前記方法。【0013】(8)温度制御装置がホルダー収容容器に設置され、ホルダー収容容器が移動することにより担体ホルダーのホルダー収容容器への収容と分離とを実施する、(7)記載の方法。【0014】(9)ロード用ステージが洗浄装置と温度制御装置とを備え、ロード用ステージもしくはロード用ホルダーの少なくとも担体を配置する表面、または担体底部が熱剥離性接着剤からなり、温度制御装置によって剥離する温度未満に変化させることにより担体へ生体分子を固定化して洗浄を行い、さらに温度を剥離温度へ上昇させることにより担体を剥離する、(7)または(8)記載の方法。【0015】(10)試料に含まれる生体分子が核酸であり、試料を分注する前に、分注装置に備えられた温度制御装置によって温度を変化させることにより、試料中の核酸をPCR反応に付す工程をさらに含む、(7)〜(9)のいずれかに記載の方法。【0016】(11)生体分子が核酸であり、担体上に固定化された核酸と試料に含まれる核酸とを相互作用させる工程の少なくとも一部において、温度制御装置によって温度を変化させることによってPCR反応を実施する、(7)〜(10)のいずれかに記載の方法。(12)PCR反応が非対称PCR反応である、(10)または(11)記載の方法。(13)担体が、シリコン材料からなる基板表面にカーボン層と化学修飾基とを有する固体支持体である(7)〜(12)のいずれかに記載の方法。分析において、担体上での生体分子の相互作用、洗浄および乾燥が効率的に実施でき、多量の担体を迅速に処理することができる。一実施形態において本発明は、担体上の生体分子を試料中の生体分子と相互作用させるための反応装置に関する。有する複数の担体収容部を有する担体ホルダー、洗浄液または気体を担体ホルダーの担体収容部に供給するための複数の供給孔を有する蓋体を備えた洗浄用ヘッド、ならびに担体ホルダーの担体収容部を収容可能な複数の凹部を有するホルダー収容容器を備える。本発明において生体分子には、一本鎖および二本鎖DNAおよびRNAなどの核酸、ポリペプチド、糖などが包含される。本発明において、ポリペプチドには、オリゴペプチドおよびタンパク質が包含される。結合反応などが挙げられる。本発明は、核酸の相互作用、特に核酸相補鎖間のハイブリダイゼーションの分析において好適に用いられる。本発明において、ロード用ステージは、生体分子が固定化された複数の担体を配置するためのものとして構成される。ロード用ステージは、既に複数の担体が配列されたロード用ホルダーを配置するためのものとして構成してもよい。実施する前に、生体分子が固定化された担体を洗浄することができる。給水装置は、通常、洗浄液を含む容器およびリンス用滅菌水を含む容器を備え、洗浄液は当技術分野で通常用いられるものを使用でき、例えば、SSC/SDSを使用できる。担体洗浄後の乾燥は、例えば、ブロー乾燥を行うブロー乾燥ヘッドまたは遠心機により実施できる。洗浄装置は、好ましくは温度制御装置を備える。温度制御装置は、通常、加熱装置を含む。ロード用ステージもしくはロード用ホルダーの少なくとも担体を配置する表面、または担体底部は、好ましくは熱剥離性接着剤からなり、熱剥離性接着剤は、担体を配置した後、温度制御装置によって一定温度に加熱されることにより担体を剥離可能な状態とすることができる。それらに発泡剤を配合した接着剤を使用できる。熱剥離性接着剤は、加熱時に接着面から発泡して剥離しやすくなる性質を有するので、加熱することにより容易に剥離できる。洗浄する前に、生体分子がスポットされた担体を温度制御装置を用いて加熱することにより、生体分子の担体への固定化を行ってもよい。ポリエステルなどのフィルム状の基材に層状に塗布されたシート(熱剥離性接着シート)も使用することができ、そのようなシートとしては市販品を利用することができる。熱剥離性接着剤または熱剥離性接着シートは、50〜200°Cで1秒〜20分加熱することにより担体を剥離可能な状態とすることができる。熱剥離性接着剤または熱剥離性接着シートを用いることにより、温度制御によって、担体を固定化して担体を洗浄するとともに、洗浄後、担体を剥離可能な状態として、反応装置に移載することができる。担体の固定化と剥離とを温度制御によって実施できることから、自動的な操作が可能であり、また生体分子が固定化された担体が汚染されるリスクを減少することができる。【0025】ロード用ステージに配置された担体は、反応装置における担体ホルダーの担体収容部に、好ましくは移載装置によって移載される。移載装置としては、ロード用ステージ上に配置された複数の担体を、担体ホルダーにおける複数の担体収容部にそれぞれ移載できるものであれば特に制限されない。移載装置は、好ましくはつかみ具および平面方向と鉛直方向へ自在に移動可能なアームユニットを備え、担体の側面をつかんで移動することにより、つかみ具が担体上に固定化された生体分子と接触することなく、担体を担体ホルダーへ搬送する。移載装置は、相互作用および洗浄後の担体を担体ホルダーから取り出して任意の平面位置へ搬送することもできる構成とすることが好ましい。ホルダー、洗浄用ヘッド、およびホルダー収容容器を備える。図1に、反応装置の一実施形態の側面図を示す。11は担体ホルダー、12は洗浄用ヘッド、13はホルダー収容容器、14は温度制御装置を示す。Mは洗浄用ヘッドの前後移動モーター、CYは上下駆動用シリンダーを示す。図1の上に記載したCYは洗浄用ヘッド12を上下に駆動するシリンダーであり、右横に記載したCYはホルダー収納容器13を上下に駆動するシリンダーである。担体ホルダー11は、排出口22を有する複数の担体収容部21を有する。各担体収容部は、通常、担体23を配置可能な底面部を有する凹状容器として構成され、洗浄液や乾燥用の気体を排出するための排出口22をそれぞれ有する。排出口22は、洗浄液や乾燥用の気体を排出できる構造であれば特に制限されず、複数でも単数でもよい。担体収容部21がざる状の構造を有していてもよい。図2に担体ホルダー11の一実施態様の断面図を示す。図2には担体収容部21が2つ示されており、各担体収容部は排出口22を有し、それぞれ担体23が収容されている。図3に複数の担体収容部が配列された担体ホルダー11の一実施態様の上面概略図を示す。担体収容部21は上方に開口しており、好ましくは、移載装置における担体23をつかむためのつかみ具が出入りするための溝31を有する。洗浄用ヘッド12は、洗浄液または気体を担体ホルダー11の担体収容部21に供給するための複数の供給孔を有する蓋体を備え、好ましくは移動可能である。洗浄用ヘッド12の蓋体は、担体ホルダー11の担体収容部21が開口している面を覆うことが可能なように構成される。洗浄用ヘッド12の蓋体の供給孔は、好ましくは担体ホルダー11の各担体収容部に対応するように形成されている。洗浄用ヘッド12は、洗浄液供給ユニットおよび気体供給ユニットに連結されており、これらのユニットから洗浄液や気体が洗浄用ヘッド12における蓋体上部の空間に供給され、循環する。図4に、洗浄用ヘッド12の一実施態様の平面図を示す。図4において、41は洗浄液または乾燥用の気体、42は蓋体、43は蓋体の供給孔を示す。蓋体の供給孔と担体ホルダー11の担体収容部21の開口との平面方向の位置を一致させ、好ましくは蓋体と担体ホルダー11とを密着させ、洗浄用ヘッド12における蓋体上部に洗浄液や乾燥用の気体を循環させることにより、供給孔から洗浄液や乾燥用の気体が排出され、担体収容部内の担体を洗浄または乾燥することができる(図5b参照)。【0030】また、上記洗浄用ヘッド12は、平面方向で移動させることにより、担体ホルダー11の担体収容部21の開口位置と蓋体の供給孔の位置とをずらすことができ、ずらした状態で洗浄用ヘッドの蓋体と担体ホルダー11とを密着させることにより、担体収容部の開口52をふさぐことができる(図5a参照)。【0031】ホルダー収容容器13は、担体ホルダーの担体収容部21を収容可能な複数の凹部を有する。担体ホルダー11の担体収容部21は、上記のとおり排出口22を有するが、ホルダー収容容器の凹部に収容されることにより、排出口22がふさがれる(図5a参照)。担体ホルダーの凹部は、好ましくは各担体収容部をそれぞれ収容可能なように、担体ホルダー11の担体収容部21の位置に対応するように形成される。【0032】ホルダー収容容器の凹部53には、生体分子を含む試料が、通常分注装置63により分注される。ホルダー収容容器の凹部に収容され、生体分子が固定化された担体が移載された担体収容部21に、試料を分注することにより、担体上の生体分子と試料中の生体分子とを接触させることができる。好ましくは、ホルダー収容容器13に収容された担体ホルダーに、担体収容部の開口52と洗浄用ヘッド蓋体の供給孔の位置をずらした状態で、洗浄用ヘッド12の蓋体を密着させることにより、担体収容部21を密封することができる。図5aに、担体収容部21が上記のように密封された状態の一実施態様を示す。図5aにおいて、13はホルダー収容容器、11は担体ホルダー、21は担体収容部、51は蓋体の供給孔、52は担体収容部の開口、12は洗浄用ヘッド、42は洗浄用ヘッドの蓋体を示す。本発明の反応装置において、担体23および試料の温度を制御する温度制御装置14は、好ましくは、ホルダー収容容器13に設置される。条件、例えばハイブリダイゼーション条件を制御することができる。生体分子の相互作用または反応を行った後、担体ホルダー11とホルダー収容容器を分離すると、担体収容部21の排出口22から試料が流れ出るため、担体23と試料とを分離することができる。洗浄用ヘッド12の蓋体の供給孔と担体収容部の開口52の位置が一致するように蓋体を移動後、好ましくは洗浄用ヘッドの蓋体と担体ホルダー11とを密着させ、供給孔から洗浄液を供給することにより、担体収容部内の担体を効率的に洗浄することができる。供給孔から気体、好ましくは窒素などの不活性気体を供給することにより、担体23を乾燥させることもできる。図5bに、担体ホルダー11とホルダー収容容器13が分離している状態の一実施態様を示す。図5bにおいて、12は洗浄用ヘッド、11は担体ホルダー、13はホルダー収容容器、21は担体収容部、42は洗浄用ヘッドの蓋体、51は蓋体の供給孔、52は担体収容部の開口、53はホルダー収容容器の凹部、54の矢印は洗浄液または気体の流れる方向を示す。洗浄用ヘッド12において、蓋体の供給孔の位置を担体収容部21の開口部と一致させたりずらしたりする操作は、一旦、洗浄用ヘッド12の蓋体と担体ホルダー11とを上限に分離した後、洗浄用ヘッド12を平面方向に移動させることにより行うのが好ましい。担体ホルダー11のホルダー収容容器への収容、および担体ホルダー11のホルダー収容容器13からの分離は、担体ホルダー11およびホルダー収容容器13のいずれを移動させることによって行ってもよいが、好ましくはホルダー収容容器13を上下に移動させることによって行う。分注装置63は、反応装置におけるホルダー収容容器の凹部53に収容された担体収容部21に、生体分子を含む複数の試料をそれぞれ分注する。分注装置63は、当技術分野で通常用いられるものを使用でき、通常、複数の試料を収容する容器(例えば、96ウェルもしくは384ウェルプレート)ならびに容器を収容する蓋閉め可能なホルダー部と、複数本のチップノズルと、チップノズルにチップを装着および脱着させる機構と、装着されたチップが試料を吸引または注入する機構と、平面方向と鉛直方向へ自在に移動可能なアームユニットを備える分注ヘッドを有する。分注装置63のホルダー部は、好ましくは温度制御装置を備える。温度制御装置は、通常、加熱装置および冷却装置を含む。試料に含まれる生体分子が核酸である場合は、ホルダー部を蓋により密閉した状態で温度制御装置によって、分注装置63の容器内に収容された試料の温度を変化させることにより、該容器内でPCR反応を実施することができる。分注装置63においてPCR反応を実施できる構成とすることにより、核酸を相互作用させる場合に、試料内に含まれる核酸を予め別の装置で増幅させる必要がなく、試料をそのまま分注装置63の容器にサンプリングするだけで、そのまま相互作用に使用することができる。本発明の生体分子分析装置は、上記反応装置、ロード用ステージ61、移載装置および分注装置63に加えて、相互作用および洗浄後の担体23を取り出して配置するためのアンロード用ステージ62を備えることが好ましい。一実施態様の上面概略図を示す。図6において、11は担体ホルダー、13はホルダー収容容器、12は洗浄用ヘッド、61はロード用ステージ、62はアンロード用ステージ、63は分注装置示す。図6において、ロード用ステージに配置された担体は、場合により洗浄され、移載装置(図示せず)によって担体ホルダー11に移載される。ここで担体ホルダー11の担体収容部は、ホルダー収容容器の凹部にそれぞれ収容され、その結果担体収容部の排出口はふさがれている。分注装置63は、チップノズルに装着された複数のチップ内に試料を吸引したヘッド部が、X−Y方向に移動することによって、担体ホルダー11の上部へ到達後、下降し、担体収容部内に試料を分注する。続いて、洗浄用ヘッド12がX−Y方向に移動して、担体ホルダー11の上部へ移動し、そしてさらに上下(Z方向)に移動することにより、洗浄用ヘッド12の蓋体が担体ホルダー11と密着する。担体収容部内で生体分子の相互作用または反応が行われる。このとき、洗浄用ヘッド12の蓋体が、供給孔の位置を担体ホルダー11の開口に対してずらした状態で担体ホルダー11に密着することにより、担体収容部内は密封される。この際、温度制御装置が担体収容部内の温度を制御する。反応終了後、ホルダー収容容器13と担体ホルダー11とが分離することにより、担体ホルダー11の排出口から試料が流れ出し、担体と試料とが分離される。洗浄用ヘッド12が一旦担体ホルダー11と離れ、X-Y方向にわずかに移動し、蓋体の供給孔の位置と担体収容部の開口部の位置を合わせ、再び蓋体と担体ホルダー11とが密着する。供給孔から洗浄液または気体が供給されることにより、担体の洗浄および乾燥が行われる。その後、洗浄用ヘッド12は、担体ホルダー11の上部から離れ、移載装置により担体は担体ホルダー11から取り出される。本発明はまた、生体分子の相互作用を分析する方法に関する。本発明の方法は、a)生体分子が固定化された複数の担体23をロード用ステージ61に配置する工程、b)担体23を、ロード用ステージ61から、排出口を有する複数の担体収容部21を有する担体ホルダー11に、好ましくは移載装置により移載する工程、ここで該担体ホルダー11の担体収容部21は、担体ホルダー11の担体収容部21を収容可能な複数の凹部を有するホルダー収容容器13の該複数の凹部に収容されており、c)分注装置63により、生体分子を含む複数の試料を担体ホルダー11の担体収容部に分注する工程、d)洗浄液または気体を担体ホルダーの担体収容部21に供給するための複数の供給孔を有する蓋体を備えた洗浄用ヘッド12を移動させて担体ホルダー11を蓋体で覆うことにより、担体ホルダー11の担体収容部21を密封する工程、e)温度制御装置14、好ましくはホルダー収容容器13に設置された温度制御装置14により試料および担体の温度を変化させることにより、担体上に固定化された生体分子と試料に含まれる生体分子とを相互作用させる工程、およびf)担体ホルダー11とホルダー収容容器13とを分離させ、好ましくは、ホルダー収容容器13を下降させることにより担体ホルダー11の担体収容部21をホルダー収容容器13から分離させ、洗浄用ヘッド12の蓋体の供給孔から洗浄液または気体を担体収容部21に供給することにより担体23を洗浄または乾燥する工程を含む。工程fにおいて、工程eで相互作用しなかった生体分子は洗い流され、担体上の生体分子と相互作用した生体分子のみが担体上に残る。担体の乾燥は、窒素等の不活性気体を供給孔から吹き付けることによって行う。上記のように処理された担体は、相互作用を検出する工程に付される。相互作用の検出方法は、用いる生体分子および相互作用に基づいて、当業者であれば適宜選択できる。DNA、合成RNA、合成ペプチド等が挙げられる。試料としては予め対象の生体分子を抽出したものを分注装置63に設置することが好ましい。生体分子の抽出は、当技術分野で通常用いられる方法により実施できる。DNAを抽出する場合には、フェノール抽出及びエタノール沈殿を行う方法、臭化セチルトリメチルアンモニウムを用いる方法、ガラスビーズを用いる方法などを利用することができる。RNAを抽出する場合には、グアニジン−塩化セシウム超遠心法、ホットフェノール法、又はチオシアン酸グアジニウム−フェノール−クロロホルム(AGPC)法などを利用することができる。試料に含まれる生体分子として核酸を相互作用させる場合は、試料を分注する前に、分注装置63に備えられた温度制御装置によって温度を制御することにより、試料中の核酸をPCR反応、好ましくは非対称PCR反応により増幅することができる。増幅は、好ましくは増幅断片が検出可能なレベルになるまで行う。【0045】PCR反応の条件は、通常、(1)94〜98°Cで0秒〜5分の熱変性、(2)95〜98°Cで0秒〜5分の熱変性、(3)37〜68°Cで0秒〜2分のアニーリング、(4)70〜75°Cで5秒〜5分の伸長反応、(5)70〜75°Cで約5分の伸長反応からなり、(2)〜(4)の工程を20〜40サイクル繰り返すことにより、核酸を増幅する。上記PCR反応の条件は、プライマーの種類、DNAポリメラーゼの種類および増幅する核酸の長さ等に基づき当業者であれば適宜設定できる。(2)の工程および(3)の工程で、所定の温度まで変化させるがその温度で保持することなく(すなわち0秒)、次の工程の温度への変化を開始させても、核酸を十分に増幅させることができ、PCRの反応時間を短縮できる。非対称PCRは、通常のPCRでは増幅用の2種類のプライマーをそれぞれ等量用いるのに対し、1本鎖として得たい方のプライマーを、もう一方のプライマーよりも多量に入れてPCRを行う方法である。することにより、PCRサイクルの始めのうちは2本鎖ばかりが作り出されてくるが、少ない方のプライマーが使い尽くされてくると、以後、1本鎖のDNAが毎回作り出されてくるようになる。2本鎖DNAをターゲットとして用いた場合、このDNA同士が相互にハイブリダイズしてしまい、プローブ核酸とハイブリダイズできなくなってしまうために感度が低くなってしまうという問題点があるが、非対称PCRにより調製した1本鎖DNAを用いることにより、このような問題がなく高感度な検出が可能になる。本発明において、非対称PCRにおける一方のプライマー濃度に対する他方のプライマーの濃度比は、通常1未満、好ましくは1/2以下、より好ましくは1/100〜1/10である。標識体を作用させ、この標識体を検出することにより、核酸の相互作用を分析することができる。放射性同位体としては、32P、125I、35Sなどを用いることができる。蛍光物質としては、例えば、フルオレセン(FITC)、スルホローダミン(TR)、テトラメチルローダミン(TRITC)などを用いることができる。発光物質としてはルシフェリンなどを用いることができる。これら標識体の種類や標識体の導入方法等に関しては、特に制限されることはなく、従来公知の各種手段を用いることができる。標識体の導入方法としては、放射性同位体を用いるランダムプライム法が挙げられる。PCR産物に、SSCおよびSDSを含むハイブリダイズ用バッファ(例えば、1〜5×SSC/0.1〜1%SDS)を添加し、これを担体上の核酸と相互作用させることが好ましい。上記ハイブリダイズ用バッファを用いることにより、ハイブリダイゼーションの時間を短縮することができる。【0051】また、工程eにおいて担体23に固定化された核酸と試料中の核酸とを相互作用、すなわちハイブリダイズさせる態様においては、工程eの少なくとも一部において、温度制御装置14によって温度を制御することによってPCR、好ましくは非対称PCRを実施することが好ましい。少なくとも一部とは、少なくとも一部の時間において、非対称PCR反応とハイブリダイズ反応が平行して行われることを意味し、より好ましくはPCR反応とハイブリダイズ反応が平行して行われる。核酸を含む試料にポリヌクレオチドプローブを存在させてプローブの伸長反応とハイブリダイズを行うこともできる。振動等による撹拌または電場の付与を行うと反応速度を上げることができる。非対称PCRにおいて、担体23に固定化する核酸プローブは、非対称PCRにより増幅された一本鎖増幅断片の特定部位と結合し、かつ未反応のプライマーとは結合しないものであることが好ましい。この理由は、非対称PCRにより多量に増幅され1本鎖として存在する増幅断片を対象とした方がハイブリダイズの効率が格段に向上すること、増幅された1本鎖の相補鎖ができにくいことである。非対称PCRに用いるプライマーと同じ塩基配列を有する核酸をプローブとして用いると、PCR液中の未反応プライマーが優先的に増幅断片に結合してしまい充分なプローブとのハイブリダイズ効率が得られないからである。【0053】ハイブリダイゼーション反応は、ストリンジェントな条件下で行う必要がある。ストリンジェントな条件は当技術分野で周知であり、特に限定されない。ストリンジェントなハイブリダイゼーション条件とは、例えば、ナトリウム濃度が15〜40mM、好ましくは15〜20mMで、温度が40〜70°C、好ましくは60〜65°Cの条件を示す。ナトリウム濃度が16〜17mMで温度が65°Cの場合が最も好ましい。【0054】また、一実施形態においては、ロード用ステージ61もしくはロード用ホルダーの少なくとも担体23を配置する表面、または担体底部が熱剥離性接着剤または熱剥離性接着シートからなる。その場合、ロード用ステージ61は洗浄装置を備え、該洗浄装置は温度制御装置を備える。担体23をロード用ステージ61に配置した後、温度制御装置によって熱剥離性接着剤または熱剥離性接着シートを剥離可能な一定温度に加熱することにより担体23を剥離可能な状態とすることができる。本発明において処理の対象となる生体分子が固定化された担体23は、当技術分野で公知の方法によって製造することができる。生体分子をスポッティグ用バッファーに溶解し、担体上にスポッティングすることにより、生体分子を担体上に固定化する。citrate)、純水等を使用することができる。調製したスポッティング用溶液を、96ウェルもしくは384ウェルプレートに分注し、分注した溶液をスポッター装置等によって担体上にスポッティングすることができる。マイクロピペッターにて手動でスポッティングしてもよい。このとき、多種類の生体分子を互いに独立したスポットとしてアレイ状に配列することにより、この複数種の生体分子を迅速に分析することができる。固定化する生体分子が核酸である場合には、スポッター装置を用いて、ポリ陽イオン(ポリリシン、ポリエチレンイミン等)で表面処理した担体表面にスポッティングして、DNAの荷電を利用して担体上に静電結合させる方法が一般的に利用される。担体表面の処理方法として、アミノ基、アルデヒド基、エポキシ基等を有するシランカップリング剤を用いる方法も利用されている。この場合には、アミノ基、アルデヒド基等は、共有結合により担体表面に導入されるため、ポリ陽イオンによる場合と比較して安定に担体表面に存在する。本発明において、生体分子を固定化する担体としては、当技術分野で公知のものを使用でき、特に制限されない。パラジウム、ロジウム、銀、水銀、タングステン及びそれらの化合物などの貴金属、及びグラファイト、カ−ボンファイバ−に代表される炭素などの導電体材料;単結晶シリコン、アモルファスシリコン、炭化ケイ素、酸化ケイ素、窒化ケイ素などに代表されるシリコン材料、SOI(シリコン・オン・インシュレータ)などに代表されるこれらシリコン材料の複合素材;ガラス、石英ガラス、アルミナ、サファイア、セラミクス、フォルステライト、感光性ガラスなどの無機材料;ポリエチレン、エチレン、ポリプロビレン、環状ポリオレフィン、ポリイソブチレン、ポリエチレンテレフタレート、不飽和ポリエステル、含フッ素樹脂、ポリ塩化ビニル、ポリ塩化ビニリデン、ポリ酢酸ビニル、ポリビニルアルコール、ポリビニルアセタール、アクリル樹脂、ポリアクリロニトリル、ポリスチレン、アセタール樹脂、ポリカーボネート、ポリアミド、フェノール樹脂、ユリア樹脂、エポキシ樹脂、メラミン樹脂、スチレン・アクリロニトリル共重合体、アクリロニトリル・ブタジエンスチレン共重合体、ポリフェニレンオキサイド及びポリスルホンなどの有機材料等が挙げられる。本発明は、微細な平板状の構造を有する担体23に対し好適に用いられる。丸形など限定されないが、通常、1〜75mm四方のもの、好ましくは1〜10mm四方のもの、より好ましくは3〜5mm四方のものを用いる。微細な平板状の構造の担体を製造しやすいことから、シリコン材料や樹脂材料が挙げられ、特に単結晶シリコンからなる担体23に対し、本発明は好適に用いられる。本発明においては、基板の表面にカーボン層を有する固体支持体を用いるのが好ましい。カーボン層に特定の化学修飾基を導入したものが好ましい。特定の化学修飾を導入することにより分析対象となる生体分子を保持しやすくなり、また安定に固定化できるからである。ここで基板とはカーボン層を形成させるもととなる基材を意味し、このような基材としては、特に制限されないが、上記材料からなるものを使用できる。上記のような固体支持体における基材も同様に、シリコン材料、特に単結晶シリコンからなるものが好ましい。本発明において基板上に形成させるカーボン層としては、特に制限されないが、ダイヤモンド、ダイヤモンドライクカーボン、無定形炭素、グラファイト、炭化ハフニウム、炭化ニオブ、炭化珪素、炭化タンタル、炭化トリウム、炭化チタン、炭化ウラン、炭化タングステン、炭化ジルコニウム、炭化モリブデン、炭化クロムまたは炭化バナジウム等からなる層を挙げることができ、ダイヤモンドライクカーボン(DLC)層が好ましい。カーボン層は、化学的安定性に優れておりその後の化学修飾基の導入や分析対象物質との結合における反応に耐えることができる点、分析対象物質と静電結合によって結合するためその結合が柔軟性を持っている点、UV吸収がないため検出系UVに対して透明性である点、およびエレクトロブロッティングの際に通電可能な点において有利である。分析対象物質との結合反応において、非特異的吸着が少ない点においても有利である。本発明においてカーボン層の形成は公知の方法で行うことができる。高周波プラズマCVD法では、高周波によって電極間に生じるグロー放電により原料ガス(メタン)を分解し、基板上にDLC(ダイヤモンドライクカーボン)層を合成する。イオン化蒸着法では、タングステンフィラメントで生成される熱電子を利用して、原料ガス(ベンゼン)を分解・イオン化し、バイアス電圧によって基板上にカーボン層を形成する。水素ガス1〜99体積%と残りメタンガス99〜1体積%からなる混合ガス中で、イオン化蒸着法によりDLC層を形成してもよい。【0063】アーク式蒸着法では、固体のグラファイト材料(陰極蒸発源)と真空容器(陽極)の間に直流電圧を印加することにより真空中でアーク放電を起こして陰極から炭素原子のプラズマを発生させ蒸発源よりもさらに負のバイアス電圧を基板に印加することにより基板に向かってプラズマ中の炭素イオンを加速しカーボン層を形成することができる。【0064】レーザ蒸着法では、例えばNd:YAGレーザ(パルス発振)光をグラファイトのターゲット板に照射して溶融させ、ガラス基板上に炭素原子を堆積させることによりカーボン層を形成することができる。本発明の固体支持体表面のカーボン層の厚さは、通常、単分子層〜100μm程度であり、薄すぎると下地基板の表面が局部的に露出する可能性があり、逆に厚くなると生産性が悪くなるので、好ましくは2nm〜1μm、より好ましくは5nm〜500nmである。固体支持体のすべてが炭素材料で構成されていてもよい。生体分子を固定化するためには、カーボン層が形成された基板の表面に化学修飾基を導入することが好ましい。このような化学修飾基の導入は、当業者であれば適宜選択することができ、特に制限されないが、例えば、アミノ基、カルボキシル基、エポキシ基、ホルミル基、ヒドロキシル基および活性化エステル基を導入することが挙げられる。ニッケルキレート、コバルトキレート等の金属キレートを導入することも有効である。【0067】アミノ基の導入は、例えば、カーボン層をアンモニアガス中で紫外線照射することにより実施できる。カーボン層を塩素ガス中で紫外線を照射して塩素化し、さらにアンモニアガス中で紫外線照射することにより実施できる。メチレンジアミン、エチレンジアミンで等の多価アミン類ガス中を、塩素化したカーボン層と反応させることによって実施することもできる。【0068】カルボキシル基の導入は、例えば、上記のようにアミノ化したカーボン層に適当な多価カルボン酸を反応させることにより実施できる。【0069】エポキシ基の導入は、例えば、上記のようにアミノ化したカーボン層に適当な多価エポキシ化合物を反応させることによって実施できる。カーボン層が含有する炭素=炭素2重結合に有機過酸を反応させることにより得ることができる。ジペルオキシフタル酸、過ギ酸、トリフルオロ過酢酸などが挙げられる。【0070】ホルミル基の導入は、例えば、上記のようにアミノ化したカーボン層に、グルタルアルデヒドを反応させることにより実施できる。【0071】ヒドロキシル基の導入は、例えば、上記のように塩素化したカーボン層に、水を反応させることにより実施できる。活性化エステル基の導入は、例えば、塩素ガス中でカーボン層に紫外線を照射して表面を塩素化し、ついで、アンモニアガス中で紫外線を照射してアミノ化した後、適当な酸クロリドまたはジカルボン酸無水物を用いてカルボキシル化し、末端のカルボキシル基をカルボジイミドまたはジシクロヘキシルカルボジイミドおよびN−ヒドロキシスクシンイミドと脱水縮合することにより実施できる。この処理により、アミド結合を介して炭化水素基の末端に、N−ヒドロキシスクシンイミドエステル基等の活性化エステル基が結合した基を形成することができる(特開2001−139532)。【0073】DNAおよびRNA等の核酸を固定化する場合は、アミノ基、カルボジイミド基、エポキシ基、ホルミル基または活性化エステル基を導入するのが好ましい。ポリペプチドを固定化する場合は、アミノ基、カルボジイミド基、エポキシ基、ホルミル基、金属キレートまたは活性化エステル基を導入するのが好ましい。金属キレートを導入した固体支持体を使用すると、ポリヒスチジン配列等の金属イオンと親和性のある標識を有するポリペプチドを効果的かつ安定に固定化することができる。金属キレートの導入は、例えば、カーボン層が形成された基板を塩素化し、次いでこれをアミノ化した後、クロロ酢酸等のハロカルボン酸を添加してキレート配位子を導入することにより実施できる。ポリヒスチジン配列等の標識は、当業者に公知の方法により導入することができる。【0074】また、上記化学修飾基の導入は、表面カーボン層上に静電層を形成することにより行ってもよい。該静電層は、アミノ基含有化合物など正荷電を有する化合物を用いて形成することができる。【0075】カーボン層として、高分子材料と炭素系物質とを混練して成形したものを使用することもできる。炭素系物質としては、カーボンブラックおよび黒鉛が挙げられる。従って本発明においては、担体として、高分子材料と、カーボンブラックおよび/または黒鉛とを混練して成形したものの表面に化学修飾基を有する担体を使用することができる。炭素系物質は単独で使用してもよく、複数種を混合して使用してもよい。Styrene樹脂)、アクリル樹脂、メチルペンテン樹脂、フェノール樹脂、メラミン樹脂およびエポキシ樹脂などが挙げられる。カーボンブラックとしては、公知のカーボンブラックを使用でき、例えば、チャンネルブラック、サーマルブラック、ファーネスブラック、アセチレンブラック、ケッチェンブラック、黒鉛化カーボンブラックなどが挙げられる。上記高分子材料と、上記カーボンブラックおよび/または上記黒鉛との混練割合は特に限定されるものではない。混練の際に接着剤を添加し、成形してもよい。このように混練した材料は非特異的吸着を抑制できるだけでなく、自家蛍光を抑制でき、ペプチドのみならずDNA等の核酸も固定することができる。本発明の一実施形態においては、動植物の全遺伝子情報の内、目的とする解析に対して十分な情報が得られるよう絞り込んだ遺伝子を担体上に固定化する。化学物質が動植物の遺伝子に与える影響を調べる目的の場合には、エストロゲンに関連する遺伝子に絞り込んで担体上に固定化する。1などのエストロゲン関連遺伝子を担体上に固定化し、そしてエストロゲンを作用させた動植物の組織または細胞からDNAを抽出し、ターゲットとして担体上の遺伝子と反応させる。エストロゲン関連遺伝子の挙動を調べることでエストロゲンが動植物に与える影響を知ることができる。1遺伝子の発現量が増えていれば、その細胞がエストロゲンを多く取り込んでいることを示唆し、何らかの影響を受けている可能性を示している。多くの遺伝子について、その発現量の増減を調べることでその影響を知ることができる。本発明の別の実施形態においては、動植物の全遺伝子情報を適宜分類して担体上に固定化する。癌に関与する遺伝子の内、臓器別に関与する遺伝子を分類して担体上に固定化する。して、ICDH、BFP、CA125などの遺伝子を担体上に固定化する。患者肝臓よりDNAを抽出し、ターゲットとしてその担体上の遺伝子と反応させる。反応したターゲットを調べることで、その肝臓が癌化しているかどうか、癌化しているならばその進行度合いを調べることができる。ここで遺伝子には、cDNA、mRNA、aRNAおよびこれらの断片が包含される。本装置を使用することで、迅速かつ正確に、疾患関連遺伝子の探索を行うことができ、また治療薬にとっての標的分子を発見することができる。以下に、培養細胞からDNAを抽出して試料を調製し、該試料をPCR反応に付した後、DNAを固定化した担体が移載された反応装置の担体ホルダーに分注し、DNA同士を相互作用させる本発明の一実施態様について説明する。試料の前処理:細胞を培養し、細胞数を調整した試料を作成する。細胞数は1×106以下とする。その細胞を180μlのPBSに溶かし、よく分散させる。次に20μlの細胞溶解液A(EDT)、180μlの細胞溶解液B(LDT)を加え、よく混ぜ、70°Cで10分間、加温する。240μlの100%エタノールを加え、前処理試料とする。富士写真フィルム製)のカートリッジに添加する。以下は自動で行われる。試料がカラムフィルターをとおり、DNAのみがカラムに吸着する。洗浄液にて、DNA吸着カラムを洗浄する。つづいて回収バッファーを通すことでカラムからDNAが分離する。この抽出液をDNA試料とする。装置前準備:各種スポッター装置等によりプローブDNAがスポットされた3mm角シリコン担体を準備する。該シリコン担体は、3mm角のシリコン基板にダイヤモンドライクカーボン層をコーティングし、カルボキシル基で修飾後、N−ヒドロキシスクシンイミドで活性エステル化することにより作製する。シリコン担体を、ロード用ホルダーとしてのガラススライドに、1枚あたり例えば32枚配列する。5mm角シリコン担体の場合は、ガラススライド1枚あたり、例えば8枚配列する。担体が配列されたロード用ホルダーをロード用ステージに配置する。装置の電源を入れ、DNA試料を分注装置63の96ウェルプレートにそれぞれ入れる。ワークデータを入力する。(担体の板厚、ピッチ、スライド数、ロード用ホルダー基準位置、アンロード用ホルダー基準位置、ロード用ホルダーにおける1つ目の担体の座標など)。ロード用ホルダーに設置された洗浄装置に、担体固定化条件(例えば、温度80°C、1時間加熱)および担体剥離条件(例えば、温度100°C、1分加熱)を入力する。反応装置におけるハイブリダイズ条件を入力する(例えば、温度45°C、3時間)。反応装置における洗浄条件を入力する(例えば、洗浄ステップ数、洗浄液供給ボトルの指定、洗浄液吐き出し時間、乾燥エアー吹付け時間など)。各種の洗浄溶液ボトルへ洗浄液、例えば、2×SSC/0.2%SDSや純水をいれる。分注装置63にチップ(ピペットチップ、例えば96チップ)を置く。96チップ必要ないときは、めくら冶具を取りつけて対応する(チップの先の吸い込み先をふさいだもの)。チップ取りつけ用ボタンを押すと、チップノズルが下がり、チップをはめて最初の位置へ戻る。反応装置のステージにホルダー収容容器13に収容された状態で担体ホルダー11を置く。分注装置63のDNA試料が入った96ウェルプレートの各ウェルに、PCRを実施するための下記成分の溶液を分注する。【0086】PCR用の温度プログラムを作成する。(2)〜(4)を25回繰り返し。PCR開始ボタンを押して、PCRを実行する。装置運転:ロード用ステージ61が加熱される。固定化温度(80°C)に達すると固定化時間(1時間)温度が保持される。固定化時間が終了すると、洗浄液がポンプにより導入され、担体が完全に洗浄液中に浸漬するまで供給される。スターラーによる回転またはポンプによる洗浄液の循環により流水状態として、洗浄時間(15分)ほど洗浄する。このとき、加熱された洗浄液を使用する場合は、ステージを加熱設定すると設定温度まで加熱される。洗浄時間が来ると、洗浄液が排出される。続いて、担体が完全に浸漬するまで純水が供給される。流水状態として、水洗浄を行なう。洗浄時間は、リンス時間で設定された時間を行い、その後排出される。ブロー乾燥ヘッドから気体が噴出して担体の乾燥を行う。ブロー乾燥ヘッドが担体を覆う様に前後に動く。上記固定化処理および洗浄と乾燥の工程が完了した後に担体を剥離するための加熱を行う。剥離加熱が終了後に移載装置が稼働して、担体をロード用ステージ上のロード用ホルダーに取りに行く。移載装置は、担体の側面をつかんで搬送する。このとき、担体の位置にずれが生じている場合は正確な搬送ができないため担体の位置をサーチする手段を持つ。このサーチの手段としては全サーチと基準サーチを利用する。全サーチであれば、担体毎にセンサーによる位置検出が行われる。基準サーチであれば、搬送開始の際に最初に搬送する担体のみをサーチして、あとは入力されたピッチで移載をすることでサーチ時間を短縮して搬送する。移載装置で取られた担体は、反応装置にセットされた担体ホルダー11の担体収容部21に収められる。ワークデータに基づいて、全ての担体を移載する。分注装置63においてPCR反応が完了していれば、そのまま分注作業に入る。分注装置63のチップを装着したチップノズルが、96ウェルプレートから試料を吸い込める位置まで下がる。96ウェル同時にPCR反応後のDNA試料を設定された容量分、吸い込む。分注ヘッドは上昇して、反応装置上部へ移動して下降し、担体が収容された担体ホルダー11の担体収容部に試料を分注する。分注ヘッドは上昇して後退する。洗浄用ヘッドが下がり、蓋体が担体ホルダーと密着して担体収容部21を密封する。温度制御装置14によって試料および担体を加熱することにより、ハイブリダイズ反応を実施する(45°C×3時間)。ここで、ハイブリダイズ反応を実施する少なくとも一部の時間において、温度制御装置14によって温度を変化させることによってPCR反応を実施してもよい。【0091】ハイブリダイズが終了すると、洗浄用ヘッド12が上昇し、蓋体が外れる。洗浄用ヘッド12の蓋体の供給孔が、担体収容部の開口52に位置が合うように移動する。洗浄用ヘッド12が下降する。ホルダー収容容器13も下降する。供給孔より洗浄液が供給される。気体が送りこまれて担体を乾燥する。洗浄用ヘッド12が上昇して、退避する。移載された担体を直ちに既知の検出方法にて測定を行う。検出方法としては、蛍光測定器、ラジオアイソトープ測定器または化学発光測定器等による検出方法が挙げられる。測定を行わない場合は各検出方法に則して保存しなければならない。蛍光測定を行う場合は蛍光物質の退色を防ぐために、遮光及び−20°C以下の低温で保存することが好ましい。化学発光を測定する場合は溶液中で行うことが多く、洗浄行程とアンロード用ホルダーへの移送行程を除き、所定の発光時間を経た後に化学発光測定器にて測定することができる。【0093】(実施例1)DNAの相互作用シリコン担体の作成3mm角のシリコン基板にダイヤモンドライクカーボン層をコーティングし、カルボキシル基で修飾後、N−ヒドロキシスクシンイミドで活性エステル化することによりシリコン担体を作製した。【0094】DNA固定化担体の作成オリゴヌクレオチド(北海道システム・サイエンス社製)を滅菌水にて100μMに調整した。4倍濃縮Sol.6(東洋鋼鈑製)にて溶かして、終濃度5μMのDNA溶液とした。スライドガラスに熱剥離性接着剤が塗布されたシートとして熱剥離性両面テープ(日東電工社製)を貼り、移載装置(日立ハイテクノロジーズ社製)にてシリコン担体を図7のように配置した。SPBIO2000(日立ソフトエンジニアリング社製)にてDNA溶液を3200点スポット(100点/チップ)した。【0095】DNA固定化担体の洗浄DNA固定化担体を配置したスライドガラスを、80°Cのベーキングチャンバーに入れ、1時間放置して固定化した。続いて室温の洗浄液(2×SSC/0.2%SDS)にて15分間洗浄を行った。続いて、沸騰した(約90°C〜100°C)洗浄液(2×SSC/0.2%SDS)にて5分間洗浄を行った。超純水にてリンスを3回行った。遠心機にて水分を吹き飛ばした。自動核酸抽出システムQuickGene800(富士写真フィルム社製)を用いてDNAの抽出を行った。各種細胞に細胞溶解液を加え細胞を溶かし、その溶解液を装置カートリッジに添加し、DNAを抽出した。TaqTM(タカラバイオ社製)を用いて、PCRを行い、DNA試料とした。このとき、一方のプライマー濃度を10分の1にすることで、他方のプライマーより伸長するDNA鎖をより多く増幅させた。CyDye標識dCTPを用いることでPCR産物にCyDyeを取り込ませた。上記で調製したCyDye標識PCR産物をハイブリダイズ液(5×SSC/0.5%SDS)に溶かし、20μlのハイブリダイズ液とした。このハイブリダイズ液を上記で調製したDNA固定化担体に添加し、チャンバー内にて、60°Cで1時間反応させた。反応後、室温の洗浄液(2×SSC/0.2%SDS)を流速10ml/分にて送液した。2×SSCを流速10ml/分にて送液した。N2ブローにて乾燥させた。【0098】(実施例2)DNA−タンパク質の相互作用シリコン担体の作成3mm角のシリコン基板にダイヤモンドライクカーボン層をコーティングし、カルボキシル基で修飾後、N−ヒドロキシスクシンイミドで活性エステル化することによりシリコン担体を作製した。【0099】DNA固定化担体の作成オリゴヌクレオチド(北海道システム・サイエンス社製)を滅菌水にて100μMに調整した。4倍濃縮Sol.6(東洋鋼鈑製)にて溶かして、終濃度5μMのDNA溶液とした。スライドガラスに熱剥離性接着剤が塗布されたシートとして熱剥離性両面テープ(日東電工社製)を貼り、移載装置(日立ハイテクノロジーズ社製)にてシリコン担体を図7のように配置した。SPBIO2000(日立ソフトエンジニアリング社製)にてDNA溶液を3200点スポット(100点/チップ)した。【0100】DNA固定化担体の洗浄DNA固定化担体を配置したスライドガラスを、80°Cのベーキングチャンバーに入れ、1時間放置して固定化した。続いて室温の洗浄液(2×SSC/0.2%SDS)にて15分間洗浄を行った。続いて、沸騰した(約90°C〜100°C)洗浄液(2×SSC/0.2%SDS)にて5分間洗浄を行った。超純水にてリンスを3回行った。遠心機にて水分を吹き飛ばした。出芽酵母(S.cerevisiae)をYPD液体培地で終夜培養し、4°C、3000rpmで遠心し回収した。生理食塩水でリンスした後、再度遠心し回収した菌体を−80°Cで保存した。ペプスタチン)1mLで溶解し、直径0.5mmのガラスビーズが入ったチュ−ブに移した。ビードビーター(BIOSPEC社製)を用いて1分間破砕し、2分間氷冷した。この破砕を4回繰り返した。上清を回収し、12000rpm、4°C、10分間遠心分離し、上清をタンパク質抽出液として得た。Dye(アマシャムバイオサイエンス社製)1パックを1時間反応させた。RAD社製)にてタンパク質のカラム精製を行い、タンパク質試料とした。【0103】DNA−タンパク質相互作用タンパク質試料を上記で調製したDNA固定化担体に添加し、チャンバー内にて、37°Cで1時間反応させた。反応後、室温の洗浄液(TE緩衝液)を流速10ml/分にて送液した。N2ブローにて乾燥させた。【0104】(実施例3)タンパク質−タンパク質相互作用シリコン担体の作成3mm角のシリコン基板にダイヤモンドライクカーボン層をコーティングし、カルボキシル基で修飾後、N−ヒドロキシスクシンイミドで活性エステル化することによりシリコン担体を作製した。【0105】タンパク質固定化担体の作成タンパク質をPBSに溶かし、スポット試料とした。スライドガラスに熱剥離性接着剤が塗布されたシートとして熱剥離性両面テープ(日東電工社製)を貼り、移載装置(日立ハイテクノロジーズ社製)にてシリコン担体を図7のように配置した。SPBIO2000(日立ソフトエンジニアリング社製)にてスポット試料を3200点スポット(100点/チップ)した。【0106】タンパク質固定化担体の洗浄タンパク質固定化担体を37°Cのベーキングチャンバーに入れ、1時間放置して固定化した。続いて室温の洗浄液(TE緩衝液)にて15分間洗浄を行った。遠心機にて水分を吹き飛ばした。出芽酵母(S.cerevisiae)をYPD液体培地で終夜培養し、4°C、3000rpmで遠心し回収した。生理食塩水でリンスした後、再度遠心し回収した菌体を−80°Cで保存した。ペプスタチン)1mLで溶解し、直径0.5mmのガラスビーズが入ったチュ−ブに移した。ビードビーター(BIOSPEC社製)を用いて1分間の破砕し、2分間氷冷した。この破砕を4回繰り返した。上清を回収し、12000rpm、4°C、10分間遠心分離し、上清をタンパク質抽出液として得た。Dye(アマシャムバイオサイエンス社製)1パックを1時間反応させた。RAD社製)にてタンパク質のカラム精製を行い、タンパク質試料とした。TE緩衝液)に溶かし、上記で調製したタンパク質固定化担体に添加し、チャンバー内にて、37°Cで14時間反応させた。反応後、室温の洗浄液(TE緩衝液)を流速10ml/分にて送液した。N2ブローにて乾燥させた。分注装置において、DNAを含む試料(λファージより抽出したDNA)をPCR増幅するため下記成分のPCR溶液を分注した。【0112】PCR反応は、通常、(1)94〜98°Cで0秒〜5分の熱変性、(2)95〜98°Cで0秒〜5分の熱変性、(3)37〜68°Cで0秒〜2分のアニーリング、(4)70〜75°Cで5秒〜5分の伸長反応、(5)70〜75°Cで約5分の伸長反応からなり、(2)〜(4)の工程を繰り返すことにより、核酸を増幅する。本実施例では、上記(1)〜(5)の工程のうち(2)〜(4)の工程における条件を下記表3のPCR条件1〜3のように設定し、これをそれぞれ30サイクル繰り返した。0秒とは、95°Cになるまで温度を変化させるがその温度で保持せずに、95°Cに到達したらすぐに55°Cへの変化を開始させることを意味する。反応後のPCR産物1μlを電気泳動に付し、DNAの増幅を確認した。その結果、PCR条件3でもDNAの増幅が十分に認められ(図8)、PCRの反応時間を40分まで短縮できることが示された。【0116】(実施例5)ハイブリダイゼーション時間の短縮シリコン担体の作成3mm角のシリコン基板にダイヤモンドライクカーボン層をコーティングした。ダイヤモンドライクカーボン層の成膜はイオン化蒸着法によって行った。はじめにターボ分子ポンプによりチャンバー内が8×10−3Pa以下になるまで排気した。次に、水素プラズマにより予めシリコン基板表面の汚れを落とした。条件は、室温で、水素ガス流量40sccm、高周波電力100Wで行った。ダイヤモンドライクカーボン層の成膜は、メタンガス:水素ガス=47.5sccm:2.5sccmのガス流量、3Paの圧力、200Wの高周波電力、および室温の条件で行った。アンモニアプラズマによりダイヤモンドライクカーボン層表面をアミノ化した。アンモニアガス流量は18sccm、圧力は3Paで行った。ホウ酸ナトリウム(pH8.0)を溶かした溶液に10分間つけ、純水で洗浄後、真空乾燥した。つづいて基板表面のカルボキシル基を活性エステル化するため、活性化液に25°Cで20分間浸し活性化した。N−ヒドロキシスクシンイミドになるように調製した。その後、活性化した基板を純水で洗浄し、100°Cで真空乾燥させた。固定化担体の作成ウィルスのDNAと相補的なオリゴヌクレオチド(北海道システム・サイエンス社製)を滅菌水にて100μMに調整した。20vol%ポリエチレングリコール溶液にて溶かして、終濃度5μMのウィルスのDNAと相補的なオリゴヌクレオチド溶液とした。シリコン担体に熱剥離性接着剤が塗布されたシートとして熱剥離性両面テープ(日東電工社製)を貼り、移載装置(日立ハイテクノロジーズ社製)にてシリコン担体を図7のように配置した。SPBIO2000(日立ソフトエンジニアリング社製)にて、シリコン担体にウィルスのDNAと相補的なオリゴヌクレオチド溶液を28点スポットした。【0118】DNA固定化担体の洗浄DNA固定化担体を、80°Cのベーキングチャンバーに入れ、1時間放置して固定化した。続いて室温の洗浄液(2×SSC/0.2%SDS)にて15分間洗浄を行った。続いて、沸騰した(約90°C〜100°C)洗浄液(2×SSC/0.2%SDS)にて5分間洗浄を行った。超純水にてリンスを3回行った。遠心機にて水分を吹き飛ばした。TaqTM(タカラバイオ社製)を用いて、PCRを行い、DNA試料とした。PCRは以下の表4のPCR溶液を用いて行った。このとき、Cy3標識FWプライマーを用いることでPCR産物をCy3標識した。PCR反応は、95°Cで0秒、55°Cで0秒、72°Cで5秒のサイクルを30サイクル行った(実施例4のPCR条件3と同様)。上記で調製したCy3標識PCR産物をハイブリダイズ用バッファ(5×SSC/0.5%SDS)に溶かし、20μlのハイブリダイズ液とした。このハイブリダイズ液を上記で調製したDNA固定化担体に添加し、チャンバー内にて、50°Cで5分間、10分間、30分間、1時間および4時間反応させた。反応後、2×SSC/0.2%SDSで1回、2×SSCで2回、80%エタノールで2回、順にリンスした。その後、遠心機にて水分を吹き飛ばした。蛍光スキャナーFLA8000(富士写真フイルム社製)により、ハイブリダイズしたCy3標識PCR産物に由来する蛍光シグナルを測定した結果、ハイブリダイズ時間が10分間でほぼピークに達していることから、ハイブリダイズ時間は10分で十分であることがわかった(図9)。ハイブリダイズ用バッファ(SSC/SDSバッファ)を用いない場合、ハイブリダイズ時間10分では十分な蛍光シグナルが得られていなかった(図10)。※以下のタグをホームページ中に張り付けると便利です。収集に関しては慎重に行っておりますが、もし掲載内容に関し異議がございましたらお問い合わせください、速やかに情報を削除させていただきます。