ヒト腎細胞癌(RCC)において基本となる癌抑制遺伝子の欠損に加えて、高頻度に見られるドライバー遺伝子変異が明らかにされてきた。これらのゲノム変異が実際にRCCを引き起こす事を、ヒトの系で検証して発がん機構に迫ることは不可能である。そこで本研究では、ゲノム変異導入ヒトiPS細胞からインビトロでヒトネフロン(腎オルガノイド)を誘導し、さらにヒトRCCの段階的な発がん過程を再現することで、その多段階発癌の分子機構を解明する事を目指し、研究を推進している。(nonccRCC)のがん抑制遺伝子の一つであるFLCN遺伝子を欠損したヒトiPS細胞株を、CRISPR/Cas9システムにより複数株樹立するとともに、ネフロン前駆細胞への分化能の評価、さらには腎オルガノイドへの誘導を行った。並行してFLCN遺伝子がネフロン前駆細胞自体の発生や分化能に関与する可能性を検証する為、ネフロン前駆細胞特異的にFlcnを欠損した遺伝子改変マウスを作製し解析を進めている。細胞を用いてCRISPR/Cas9システムによるノックアウトの条件検討を完了した。実際のヒトccRCCにおいては、VHL遺伝子変異に加えて対側アリルの染色体3番短腕欠損が極めて高頻度に認められる。SETD2)がこの染色体3番短腕に位置していることから、染色体3番短腕欠損を人為的に導入する為の条件検討をHEK293細胞を用いて行った。planned.Reason当初の予定通り、癌抑制遺伝子FLCNノックアウトiPS細胞株を複数株樹立し、ネフロン前駆細胞へと分化させ、さらに腎オルガノイドを作製し解析中である。FLCNの欠損自体がネフロン前駆細胞への分化やその機能に影響を与える可能性を検討する為に、遺伝子改変マウスを作製しネフロン前駆細胞におけるFlcnの役割の解析を進めた。ccRCCにおいては、染色体3番短腕欠損によりVHLの完全欠損に加えて起こる3つのドライバー遺伝子の複合的な欠損の意義を検討する事が重要と考え、当初の予定にはなかった人為的に染色体3番短腕欠損を導入する為の条件検討を行い、ある程度の目処が立った。CRISPR/Cas9システムによりドライバー遺伝子に効率良く変異を導入する為の条件検討が完了しており、次年度への展開が期待される。ActivityFLCN欠損ヒトiPS細胞株の腎オルガノイドへの分化誘導実験を継続し、その特性評価を行う。加えて、FLCN欠損ヒトiPS細胞株にドライバー遺伝子変異を導入した細胞株を樹立し、さらに腎オルガノイドへと分化させ、その表現型を詳細に解析する。並行して、平成30年度に確立した染色体3番短腕欠損の人為的導入方法を用いて、片側アリルのみに染色体3番短腕欠損をもつヒトiPS細胞株を樹立する。引き続き対側アリルのVHL遺伝子をCRISPR/Cas9システムによりノックアウトしたヒトiPS細胞株を樹立するとともに、ドライバー遺伝子変異を追加で導入した細胞株の樹立を進める。変異導入iPS細胞株は樹立した時点でネフロン前駆細胞への分化効率等の特性評価をおこなう。腎オルガノイドから癌細胞が発生するまでにある程度の時間を要する可能性を踏まえ、腎オルガノイドの長期培養法の検討を並行して進める。導入するゲノム変異が、iPS細胞のネフロン前駆細胞への分化能や腎オルガノイドへの分化能に悪影響を及ぼす可能性も考えられる。HK2へのCRISPR/Cas9システムによるゲノム変異の導入も、並行して進めていく。