thermophilusをスターター菌とし、酸度0.7になるまで発酵して製造する、NK細胞活性化に有効な量の酸性多糖類を含有するヨーグルト。thermophilusを添加し、酸度0.7になるまで発酵することを含む、酸性多糖類を製造する方法。thermophilusを添加し、酸度0.7になるまで発酵することを含む、NK細胞活性化に有効な量の酸性多糖類を含有するヨーグルトの製造方法。決め手として注目されている。NK細胞の活性(破壊能力)は加齢とともに低下し、高齢になるほどガン発生率が高くなるのは、NK細胞の活性化の衰えに関連しているとされている。NK細胞は自律神経に影響を受けるため、ストレスを受けて交感神経が優位になるとNK細胞の活性(破壊能力)は激減する。このように、健康を維持するためには、NK細胞の活性化が不可欠である。NK細胞活性化を促進する物質が探索されているが、薬剤として利用されるものがほとんどである。HN019等)が知られている(非特許文献1〜6、特許文献1)が、必ずしも十分な活性を得ることが出来なかった。【0005】そこで、NK細胞を活性化し、免疫力を高める食品由来の組成物が望まれている。本発明者らは、NK細胞を活性化する食品由来の組成物を検討したところ、酸性多糖類にNK細胞活性化作用があることを見出して本発明を完成させた。上記[1]〜[3]のいずれか1つに記載のNK細胞活性化剤を含み、NK細胞活性化作用を有するものであることを特徴とし、NK細胞活性化のために用いられる旨の表示を付した発酵乳、を提供するものである。酸性多糖類からなるNK細胞活性化剤により、インフルエンザなどの感染予防、癌の予防、進行の防止などが可能となった。根本治療法のないこれらの疾患の治療または予防薬の一つを新たに提供することができる。sepharoseによる中性多糖と酸性多糖の分離を示す図である。S-400HRを用いたゲルろ過による分離を示す図である。【図3】酸性多糖を3週間経口投与したマウスにおける脾臓細胞のNK活性を示す図である。t-test)【図4】多糖産生乳酸菌を利用した発酵乳を4週間経口投与したマウスにおける脾臓細胞のNK活性を示す図である。本発明のNK細胞活性化剤は、酸性多糖類、好ましくはリン酸化多糖類を有効成分とする。リン酸化多糖類には、多糖類を産生する乳酸菌の培養物、該培養物から精製した多糖類、多糖類を化学的又は酵素的にリン酸化して得られた多糖類などが挙げられる。リン酸化多糖類中のリン含有量は0.01%以上であることが好ましく、0.1%以上であることがさらに好ましい。本願発明でいう多糖類には、当該多糖を化学的又は酵素的に分解して得られたオリゴ糖を含む。本発明に用いられる乳酸菌としては、多糖類を生産する乳酸菌であれば、種類を問わない。酸性多糖類は単独で、または種類の異なる2種以上を組み合わせて用いてもよい。等が、単独でまたは組み合わせて用いられる。P-17227)が好適である。多糖類を培養物そのままを用いても構わないが、特開2000-247895号公報記載の方法で中性多糖類を除く、または、必要に応じて下記の様にして精製したものを用いても構わない。下記の工程の一部を省略、追加しても構わない。5-10%程度のトリクロロ酢酸でタンパク沈殿、遠心b)boilすることによりタンパク質を熱変性、遠心c)b)のあとにプロテイナーゼによるタンパク分解、あるいはDNAaseによる核酸の分解処理等も行い、透析4、陰イオン交換樹脂による酸性多糖体類の吸着と溶出による回収5、ゲルろ過により分子量100万以上の物質として酸性多糖体を精製する。この時、酸性かつ分子量が近いタンパク質が混合していた場合は、ゲルろ過の前、あるいは後に何らかのタンパク除去操作を加えることも可能である。シロップ剤、浸剤、煎剤、チンキ剤等が挙げられる。希釈剤あるいは賦形剤を用いることができる。他の医薬品を医薬製剤中に含有させてもよい。NK細胞活性化作用を表示した食品等として使用できる。カプセル状、液状、ゼリー状、クリーム状、飲料等の食品とすることが出来る。摂取することにより、NK細胞活性化が図られるため、本発明で得られる食品は、インフルエンザなどの感染予防、癌の予防、進行の防止などに寄与することが可能である。以下、本発明を説明するが、本発明がこの実施例に限定されないことはいうまでもない。P-17227)を接種し、37°C、24時間の静置培養を行った。g,4°C,20min)した後、エタノール沈殿(60-70%(v/v))を2回行った。g,4°C,20min)による不溶物の除去を行った。Biosciences)を用いて中性多糖と酸性多糖の分離を行った(図1)。中性多糖はPass画分として回収し、酸性多糖はNaClを用いて0-0.5Mイオン強度勾配による溶出で回収した。Biosciences)を用いてゲルろ過を行い、分子量による分離を行った。本多糖は分子量1×106Da以上の画分と分子量がより小さい画分に分離され、分子量1×106Da以上の画分について分取した(図2)。分取した多糖はMilliQ水に対して透析後、凍結乾燥し、酸性多糖精製品を得た。多糖はグルコースを標準物質としてフェノール・硫酸法を用いて検出・定量した。Milchwissenschaft,53(8),443-6(1998))の方法で当該多糖を分析したところ、リン酸化多糖を含有していることが確認された。多糖のNK活性1.多糖のマウスへの経口投与試験マウスBALB/c(雄、8週齢、SLC社)30匹を1群10匹で3群に分け、以下の投与物を3週間、ゾンデにより強制経口投与を行った。実施例1で得た酸性多糖投与群:30mg/kg/day多糖は各濃度で蒸留水に溶解し、0.5ml/body/dayで投与を行った。2.NK活性測定3週間の投与終了後、個々のマウスよりそれぞれ脾臓を取り出し、細胞をRPMI1640(10%FCS)に懸濁することにより脾臓細胞懸濁液(1×107cells/ml)を調製した。sorter(以下FACSとする)を用いて測定した。perchlorate(以下Dioとする)により蛍光染色した後、脾臓細胞とともに96穴マイクロプレート(丸底)を用いて37°C、5%CO2条件下で4時間培養を行った。Iodide(以下PIとする)を培養液に加え、死細胞を染色した。Methods,185(2),209-16(1995))。エフェクター細胞とターゲット細胞の比率は40:1とした。その結果、酸性多糖30mg/kg/day投与群の脾臓細胞NK活性はコントロールである水投与群に比べ有意に高かった(P<0.01)。酸性多糖5mg/kg/day投与群においてもコントロールに比べ高い傾向(P<0.1)が見られた(図3)。P-15487)をスターター菌として加え、43°Cで発酵を行った。酸度0.7で発酵を終了し、4°Cで1日保存することで最終酸度0.78となった。OLS3295をスターター菌として用いた発酵乳についても作製した。多糖産生乳酸菌を利用した発酵乳のNK活性1.多糖産生乳酸菌を利用した発酵乳のマウスへの経口投与試験マウスBALB/c(雄、11週齢、SLC社)32匹を1群8匹で4群に分け、以下の投与物を4週間、ゾンデにより強制経口投与を行った。200mg/body/day発酵乳、発酵乳Mixは凍結乾燥物を用い、投与時に200mg/mlで蒸留水に懸濁した。2.NK活性測定4週間の投与終了後、個々のマウスよりそれぞれ脾臓を取り出し、細胞をRPMI1640(10%FCS)に懸濁することにより脾臓細胞懸濁液(1×107cells/ml)を調製した。sorter(以下FACSとする)を用いて測定した。perchlorate(以下Dioとする)により蛍光染色した後、脾臓細胞とともに96穴マイクロプレート(丸底)を用いて37°C、5%CO2条件下で4時間培養を行った。Iodide(以下PIとする)を培養液に加え、死細胞を染色した。Methods,185(2),209-16(1995))。エフェクター細胞とターゲット細胞の比率は40:1とした。OLL1073R-1を使用した発酵乳投与群においてNK活性がコントロールである蒸留水投与群に比べ有意に高く(p<0.05)、発酵乳Mixと対照発酵乳に対しては高い傾向(p<0.1)が見られた(図4)。しても利用することができる。Reserved.4。