Dreeszen配管内に滞留している水は微生物の発育の温床になっていて、その微生物は最終的に動物の飲水中に入ります。新鮮さを保つために飼料を回転させると同じように、水もその品質を維持するために交換する必要があります。細菌は滞留していてあまり使われない水の中では急速に増殖します。“理想的な”条件下では、細菌は20分ごとに2倍に増えます。そのような増殖速度では、1つの細菌細胞は12時間後に10億個以上になります!幸いなことに、多くの飲料水はこのような発育に必要な栄養素を含んでいません。数字を見れば明らかなように、ラック・マニホールドと室内配管を定期的にフラッシングすることが大切です。定期的フラッシングのベネフィットには以下のようなことがあります。滞留はデッドレッグ(配管端末の水の流れないところ)、あまり使われないおよび全く使われない動物室、流速が非常に遅いラック・マニホールドの中で起きます。マニホールドの中にある水は動物が1日に飲む量に等しいかそれよりも多いのです。細菌数は滞留水の中で増加し、化学品がある種のプラスチック製配管から溶出するおそれがあります。定期的なフラッシングによって滞留水は細菌数が少なく化学品に汚染されていない新鮮な飲水と置換されます。バイオフィルムの厚さが薄くなります配管内の細菌はその内面に付着して、そこでバイオフィルム**を形成します。水の流れを速くするだけではそれを完全に取り除くことができません。フラッシングの剪断力はバイオフィルムの厚さを最小限にしてくれます。バイオフィルムの厚さが薄ければ薄いほど消毒剤の効果が高まります。配管表面まで拡散・到達する距離が短いからです。自動給水装置への供給水に塩素が含まれているとき(施設における塩素注入あるいは水道水のいずれかにより)、残留塩素濃度はラック・マニホールドのように滞留していたり流れの遅いライン中では消散してしまいます。塩素のような消毒剤がないと細菌が増殖します。定期的なフラッシングによって滞留水が新鮮な塩素含有水と置換されます。動物の飼料を回転させると同じように水を交換することによって衛生状態が良くなり、動物の飲水の品質が高まります。**バイオフィルムに関する資料はエデストロム・ジャパンへお申し付けください。Industriesにはお客様に最良の給水装置をお届けする任務があります。この任務を続けるために、当社は継続的に水質に関する製品をテストし改良して動物のための飲水を最もクリーンに保つように努力しています。以下の記事は当社のごく最近のテストを要約したものです。IndustriesのR&D研究所には、飲水バルブとマニホールドの新製品を生きたマウスでテストするために用いるマイクロ・アイソレーター・マウス用ラックがあります。このラックは、動物施設における多くのマイクロ・アイソレーターと同じように、2年以上もの間、滞留/ノー・フラッシング・モードで使われてきました。最近、このラックの運転を毎日のオンライン・フラッシング・モードに切り換え、前後における飲水の細菌学的品質を比較することにしました。結果はまったく劇的なものであり、オンライン・フラッシングによって細菌数を低く抑えることができることがわかりました。“滞留”モード140ケージ収容のマイクロ・アイソレータ・マウス用ラックは25カ月間“滞留”モードで運転されてきました。4週間のテスト期間中に、ラックには180匹のマウスを収容しました。ラックを通った水はマウスが飲んだ水の分だけでした。mLの入ったマニホールドから180匹のマウスが水を飲むとすれば、全部の水が入れ替わるには平均44時間かかります。ラックには水流が速いところはありませんでした。4-5に調整しました。Proportionerからラックへの“配管”はテスト実験室に独自のものであって実際の動物施設に一般的に見られるものではありませんでした。mの1/4”IDポリウレタン製コイル・チューブで連結しました。サンプル採取ラックからの水を“滞留”モード運転中の4週間は毎週サンプリングしました。採取した水の総細菌数と塩素濃度を測定しました。mg/Lまで減っていました。cfu/mL)でした。このページのTOPへオンライン・ラック・フラッシング・モードオンライン・ラック・フラッシングを1999年8月中旬に開始しました。その目的は供給水、配管およびフラッシング運転を実際の動物施設と同じようにして細菌数が実際にどうなるかを見ることでした。供給水は塩素添加の逆浸透(RO)純水に変更しました。Industries.参照)。RO水貯蔵タンク中の全水量は平均して24時間以内に入れ替わりました。RDSパイプから構成されています。オンライン・ラック・マニホールドのフラッシングオンライン・ラック・マニホールドのフラッシングは自動運転であり、ラック中の滞留している飲水を除去します。フラッシングは高水圧への移行とラック・マニホールドの排水口の電磁弁を開放することによって開始されます。高水圧は流速を増加させ、パイプ内面に付着しているバイオフィルムを少なくします。新鮮な塩素含有水が定期的にラックに送り込まれて、連続的に消毒が行われます。フラッシングは1日あたり2フラッシング(正午と真夜中)、各5分のフラッシング持続時間でプログラムしました。mg/L濃度に塩素を添加した水で15分間2回(正午と真夜中)フラッシングして消毒しました。mg/Lにセットしました。mg/Lにまで下げました。サンプル採取ラック・マニホールドからの水を“毎日午前10時と正午の間にサンプリングしました。正午のフラッシングの2時間前以内(最後のフラッシングから10-12時間後)にサンプリングすることによって、細菌数が最高になると思われる“最悪の場合”を知ることができました。採取した水の総細菌数と塩素濃度を測定しました。結果マニホールド中の塩素濃度は、RO貯蔵タンク中と同じかやや低い程度でした。このことはフラッシングサイクルの間における塩素の消失が非常に少ないことを意味しています。cfu(コロニー形成単位)以下でした。cfu/mL以下)でした。要約オンライン・ラック・フラッシングによってマイクロアイソレーター・ラック・マニホールド中の水の細菌学的品質が劇的に改善されました。cfu/mL以下になりました。1日2回のフラッシング回数は、ラック中の残留塩素濃度を持続させるのに十分でした。このページのTOPへ水のサンプリングと細菌数測定方法オンライン・ラック・フラッシング・テスト期間中、以下の方法を用いました。mLの水をバルブからバケツに洗い流します。mLの水を採集します。水は塩素を含んでいるので、サンプルをThio-BagRに採集しました。これは塩素を中和するためのチオ硫酸ソーダ錠剤を入れた滅菌済みディスポーザブル・バッグです。用いて水中に存在し特定の培養時間および温度条件下で発育できる生きた従属栄養菌の数を測定しました。以下の一般的な方法を用いました。細菌数の多い“滞留”モードのテスト期間中は、平板培養する前に1:1000希釈を行いました。Agar(トリプトン・グルコース・酵母寒天)を注入しておいたプレートを使用する約1時間前に冷蔵庫から取り出して室温にまで温めます。サンプル・バッグを逆さまにするか振って混合します。滅菌ディスポーザブル・ピペットを用いて、1.0-mLの水を採取します。プレートのカバーの端を少し開けて寒天の表面にピペットの中味を注ぎます。傾けながらサンプルを展開させます。プレートを卓上に30分間あるいはすべての水が寒天に染み込むまで放置します。プレートを逆さにして、35-37°Cで培養します。46-50時間後にコロニーを数えます。フィルターカートリッジを30日ごとに交換してください。交換しないと水の流れが遅くなるおそれがあります。脱着式リコイルホースは使わないときは外しておいてください。使われていないホースには水が滞留し細菌が住み着きます。当社は動物実験施設のアンケート調査を行い、ケージラックの洗浄および給水マニホールドのフラッシングについて質問を行いました。(注:この調査対照の施設では、自動オンライン・マニホールド・フラッシング装置はありませんでした。