[0073]前記キメラタンパク質が、好ましくは、ホスト植物又は該ホスト植物以外の植物種であるドナー植物2のミオシンXIタンパク質のネックドメイン、ロッドドメイン及び球状テールドメイン、並びに、前記モータードメインについてのドナー植物1由来のモータードメインを含む。australis)である。[0075]本発明の製造方法において、好ましくは、前記ホスト植物及び/又はドナー植物2が、単子葉植物及び双子葉植物のいずれかである。distachyon)、イネ、小麦、ライ小麦、大麦、オート麦、ライ麦、モロコシ、キビ、サトウキビ及びメイズ(トウモロコシ)などが挙げられるが、これらに限定されない。thaliana)、タバコ、トマト、ジャガイモ、マメ、ダイズ、ニンジン、キャッサバ、アルファルファ及び綿などが挙げられるが、これらに限定されない。形質転換植物を取得する方法、及び双子葉植物の形質転換植物を取得する方法について説明する。キメラミオシンXI遺伝子の構築キメラミオシンXI遺伝子は、シャジクモ属に属する植物のミオシンXIタンパク質のモータードメインをコードする領域と、ドナー植物2のミオシンXIタンパク質のネックドメイン、ロッドドメイン及び球状テールドメインをコードする領域とを連結したキメラ遺伝子であり、ドナー植物1とドナー植物2とのミオシンXIタンパク質の各ドメインを有するキメラミオシンXI遺伝子を遺伝子組換え技術により作製する。このキメラミオシンXI遺伝子コンストラクトは、当技術分野で公知の方法を用いて構築することができる。[0080]具体的には、まず、シャジクモ植物及びドナー植物2のcDNAライブラリーを用いてそれぞれのミオシンXI遺伝子をクローニングする。cDNAライブラリーは、公知の方法で構築することができる。シャジクモ植物及びドナー植物2のそれぞれのmRNAを公知の方法で抽出する。次に、調製した各mRNAプールを鋳型として、RT(逆転写)反応によりcDNAライブラリーを作製する。当技術分野で公知の技術を、mRNA抽出及びRT反応条件、及び目的の遺伝子を単離する特異的な方法を含む特定の調製方法に用いることができる。商業的に製造され利用可能なmRNA及びcDNAを調製するための様々なキットを利用することができる。特定のタイプのドナー植物などのために市販されているcDNAライブラリーを使用することもできる。[0081]次に、適当なプライマーセット(例えば、逆PCR、アンカーPCR、TAIL-PCR等のPCR法)を用いた核酸増幅法により、各植物由来のミオシンXI遺伝子をcDNAライブラリーから単離する。この場合の方法として、適切なプローブを用いたハイブリダイゼーション法(例えば、プラークハイブリダイゼーション法)が挙げられる。Applications(1990)の方法によって実施することができる。核酸増幅法に用いられるプライマー又はハイブリダイゼーション法に用いられるプローブは、NCBIのデータベース(http://www.ncbi.ncbi.ac.jp)、理研植物科学センターのデータベース(http://www.psc.riken.jp/database/index.html)、又は、かずさDNA研究所のDNA配列解析情報データベース(http://www.jazysa.ir.jp/j/resources/database.html)等の一般的に入手可能なデータベースから入手できる核酸配列情報に基づいて目的とするミオシンXI遺伝子を設計することができる。他にも、このようなプライマー及びプローブは、アミノ酸配列番号14、16及び18で表されるシャジクモのミオシンXIタンパク質のモータードメイン、さらに、アミノ酸配列番号24で表されるミナトカモジグサのミオシンXIタンパク質をはじめとした単子葉植物のミオシンXIタンパク質又はアミノ酸配列番号34で表されるシロイヌナズナをはじめとした双子葉植物のミオシンXIタンパク質のネックドメイン及びテールドメインのアミノ酸配列に基づいて予測されるヌクレオチド配列(例えば、配列番号35)に基づいて設計することができる。プライマー及びプローブは、設計されたヌクレオチド配列に基づく化学合成によっても調製することができる。[0082]シャジクモ属に属する植物のミオシンXI遺伝子については、モータードメインをコードする5’末端領域を単離することができれば、その下流領域又は全長遺伝子を必ずしも単離する必要はない。同様に、ドナー植物2のミオシンXI遺伝子に関しては、ネックドメイン、ロッドドメイン及び球状テールドメインをコードする領域を単離することができれば十分であり、モータードメインをコードする領域を含む5’末端領域を必ずしも単離する必要はない。[0083]次に、シャジクモ属に属する植物のミオシンXI遺伝子又はミオシンXIのモータードメインをコードする領域の5’末端領域を含む遺伝子断片、及び、ドナー植物2のミオシンXI遺伝子又はネックドメイン、ロッドドメイン及び球状テールドメインをコードする領域を含む3’末端領域を含む遺伝子断片を用いて、キメラミオシンXI遺伝子を構築する。キメラミオシンXI遺伝子は、適切に設計されたプライマーセットを用いた核酸増幅法及び関連するドメインをコードする各領域を、目的とする組み合わせで各ドメインの機能が発揮できるように連結して、関連ドメインをコードする領域を含む遺伝子断片をクローニングすることによって構築することができる。各ドメインは、野生型ミオシンXIと同一の配置でヌクレオチド配列上に配置されることに留意を要する。各ドメインをコードする領域の連結は、制限酵素や1本鎖オーバーハング等により生じた結合末端に対するリガーゼ処理による酵素結合、又は接続のための配列(制限酵素切断部位)を有するプライマーを用いたPCR等の核酸増幅法を用いて行うことができるが、下流のリーディングフレームにフレームシフトがないことを条件とする。[0084]シャジクモ属に属する植物の上記の配列で特定されるモータードメインとドナー植物2のIQモチーフ及びロッドドメインをモータードメインのC末端側に存在するレバーアームαヘリックス内で連結することが望ましい。「レバーアームαヘリックス」は、ネックドメインと変換ドメインなる領域に相当する。モータードメインに含まれる変換ドメインのC末端近傍の位置から開始するらせん構造を有する(図1参照)。brauniiのCbM1の場合、レバーアームαヘリックスは、729~877番目のアミノ酸残基を有する。この場合、変換ドメインは729~741番目のアミノ酸残基を有し、ネックドメインは743~883番目のアミノ酸残基を有する。シロイヌナズナのミオシンXI-2の場合、レバーアームαヘリックスは722~870番目のアミノ酸残基を有する。この場合、変換ドメインは722~735番目のアミノ酸残基を有し、ネックドメインは736~876番目のアミノ酸残基を有する。具体的には、シャジクモ属に属する植物のミオシンXIの変換ドメインのC末端の直後の位置を、ドナー植物2のネックドメインの最もN末端側に位置するIQモチーフのN末端に連結することが好ましい。344:311-315)。ドナー植物2のミオシン軽鎖がIQモチーフに結合するためには、ドナー植物2の完全なIQモチーフが必要である。Bradi2g41977.1)の759番目の位置で結合させる。brauniiの第742番目アミノ酸残基及びミオシンXIタンパク質における、その下流領域に相当する。BAA98070.1)の配列番号34のアミノ酸配列の735番目の位置で結合させる。brauniiのミオシンXIタンパク質の第742番目アミノ酸残基及びその下流領域に相当する。上記で記載した方法で構築したキメラミオシンXI遺伝子を発現ベクターに挿入して、必要に応じてホスト植物に発現させることができる。「発現ベクター」とは、そこに含まれる遺伝子等を目的の植物細胞に輸送し、適切な条件下で遺伝子を発現させることができる核酸発現系をいう。具体的には、プラスミドを利用したプラスミド発現ベクター、ウイルスを利用したウイルス発現ベクター等が挙げられる。[0088]使用することができるプラスミド発現ベクターの例としては、pBI、pPZP、pSMA、pUC、pBR、pBluescript(ストラタジーン)及びpTriEXTM(TaKaRa)、及びpBI及びpRIバイナリーベクターなどが挙げられる。[0089]また、ウイルス発現ベクターの場合、カリフラワーモザイクウイルス(CaMV)、ゴールデンモザイクウイルス(BGMV)、タバコモザイクウイルス(TMV)などを利用することができる。[0090]発現ベクターは、プロモーター、ターミネーター、エンハンサー、ポリA付加シグナル、5’-UTR(非翻訳領域)配列、標識又は選択マーカー遺伝子、マルチクローニングサイト、複製起点などを含むことができる。各成分の種類は、植物細胞内でその機能を発揮できるものであれば特に限定されない。当該分野で公知の成分は、発現ベクターが導入される植物又は植物におけるその成分の目的(例えば、発現パターン)に応じて適切に選択することができる。[0091]プロモーターとしては、ホスト植物又はドナー植物2の内在性ミオシンXI遺伝子のプロモーターの他に、過剰発現型プロモーター、構成性プロモーター、部位特異的プロモーター、時期特異的プロモーター及び/又は誘導性プロモーターを用いることができ、目的とする発現パターンに依存する。過剰発現型プロモーターの例としては、カリフラワーモザイクウイルス(CaMV)由来35Sプロモーター、Tiプラスミド由来ノパリンシンターゼ遺伝子プロモーター(Pnos)、トウモロコシ由来ユビキチンプロモーター、イネ由来アクチンプロモーター、タバコ由来のPRタンパク質プロモーターなどが挙げられる。ssu)プロモーター又はヒストンプロモーターを使用することもできる。部位特異的プロモーターとしては、例えば、特開2007-77677号公報に記載の根特異的発現を誘導するプロモーターが挙げられる。[0092]上記のとおり、増強された成長力は、植物全体の成長の向上又は植物の一部の成長の増強であってもよい。35Sターミネーター、大腸菌リポポリプロテイン(lpp)の3’ターミネーター、trpオペロンターミネーター、amyBターミネーター、ADH1遺伝子ターミネーターなどが挙げられるが、上記プロモーターにより転写される遺伝子の転写を終結させる配列を有するものであれば特に限定されない。ホスト植物又はドナー植物2の内因性ミオシンXI遺伝子に固有のターミネーターを使用してもよい。35Sプロモーターの上流配列及びCMVエンハンサーを含むエンハンサー領域が挙げられる。エンハンサーとしては、キメラミオシンXIタンパク質の発現効率を高めることができるものであれば特に限定されない。II)及びジヒドロ葉酸レダクターゼなどの酵素が挙げられる。標識又は選択マーカー遺伝子を、キメラミオシンXI又は別の発現ベクターを含む発現ベクターに挿入することができる。後者の場合、各発現ベクターを目的とする植物に同時導入することにより、上記遺伝子が連結された単一の発現ベクターで得られる効果と同等の効果を得ることができる。[0096]キメラミオシンXI遺伝子を特定部位の発現ベクターに挿入する方法としては、当該分野で公知の方法を用いることができる。(1989)に記載されており、この方法に従って実施できる。DNAポリメラーゼを用いて得られる3’-A突出末端を有するPCR産物の場合には、対応する制限酵素部位又はマルチクローニング部位、又は5’-T突出末端で適切な発現ベクターに挿入して連結する。市販のシステム又はキットを使用する場合、それらのシステム又はキットに特有の方法を使用して調製することができる。ゲートウェイシステム(Invitrogen(登録商標))を使用することができる。形質転換方法ホスト植物を形質転換する方法としては、当該分野で公知の方法を用いることができる。一般に、キメラミオシンXI遺伝子又はその遺伝子を含むプラスミド発現ベクター又はウイルス発現ベクターをホスト植物細胞に導入することにより形質転換することができる。[0098]キメラミオシンXI遺伝子又はその遺伝子を含むプラスミド発現ベクターを用いてホスト植物を形質転換する場合、プロトプラスト法、パーティクルガン法、アグロバクテリウム法などを用いることができる。[0099]プロトプラスト法は、セルラーゼなどの酵素処理によりホスト植物細胞の細胞壁を除去してプロトプラストを得て、これに既知のキメラミオシンXI遺伝子を導入する方法である。電気穿孔法、マイクロインジェクション法、ポリエチレングリコール法などの技術を用いて行うこともできる。エレクトロポレーション法は、プロトプラストと目的とする遺伝子との混合物に電気パルスを印加して、プロトプラストに遺伝子を導入することを含む。マイクロインジェクション法は、顕微鏡下でマイクロニードルを用いてプロトプラストに目的とする遺伝子を直接導入することを含む。ポリエチレングリコール法は、ポリエチレングリコールを作用させてプロトプラストに目的とする遺伝子を導入する方法である。[0100]パーティクルガン法とは、金、タングステン等の微粒子に目的とする遺伝子(本発明の場合、キメラミオシンXI遺伝子)を付着させ、その粒子を高率に植物組織細胞に撃ち込む方法である。目的とする遺伝子を細胞に導入することができる。これにより、目的とする遺伝子がホスト細胞のゲノムDNAに組み込まれた形質転換体を得ることができる。一般に、形質転換された細胞は、マーカー遺伝子産物の存在に基づいてスクリーニングすることができる。[0101]アグロバクテリウム法は、形質転換因子としてアグロバクテリウム属細菌(例えば、A.ツメファシエンス又はA.リゾゲネス)を用い、誘導されるTiプラスミドを用いてホスト植物細胞に目的とする遺伝子を導入する形質転換法である。[0102]上記の形質転換方法のいずれも当技術分野で公知である。1993に記載されており、この方法に従って実施できる。[0103]また、キメラミオシンXI遺伝子を含むウイルス発現ベクター(例えば、上記のCaMV、BGMV、TMV)を用いる場合には、キメラミオシンXI遺伝子をウイルスベクターと一緒に植物細胞に感染させてホスト植物細胞に導入することができる。具体的には、例えば、エシェリヒア・コリ由来のベクターなどのクローニングベクターに植物ウイルスゲノムを挿入して組換え体を作製し、この組換え体のウイルスゲノムにキメラミオシンXI遺伝子を挿入する。その後、制限酵素を用いて植物ウイルスゲノム領域の組換え体を切り出し、得られたウイルスゲノムを目的とする植物細胞に感染させることによって、目的とする遺伝子を植物細胞に導入することができる。p549、及び、米国特許公報第4,407,956号などに記載されている。[0104]また、上記の方法で形質転換されるホスト植物は、野生株又は変異株のいずれの植物であってもよい。ホスト植物が変異株の植物である場合、キメラミオシンXI遺伝子のドナー植物2由来のテールドメインと同一の型のミオシンXIの遺伝子が欠損しているノックアウト植物であることが好ましい。ホスト植物に導入されるキメラミオシンXI遺伝子のテールドメインがドナー植物2のミオシンXI-1遺伝子由来である場合、ホスト植物は、ミオシンXI-1欠損変異株の植物であることが好ましい。されたホスト植物細胞から成長が増強された植物を再生する方法は、形質転換された植物細胞からトランスジェニック植物を再生するための公知の方法に基づいて行うことができる。vitro再生方法である。このような方法は当技術分野で公知である。1993等に記載の方法が挙げられる。planta法を用いることも可能である。オーキシン、ジベレリン及び/又はサイトカイニンなどの植物ホルモンを、形質転換細胞の成長及び/又は分裂を促進するために使用することができる。distachyon)を例として、その形質転換植物を製造する場合について説明する。Bradi2g41977.1)由来が使用できる。この場合、ネックドメインは、配列番号20のアミノ酸配列の734~873番目のアミノ酸残基を有し、ロッドドメインは、配列番号20で示されるアミノ酸配列の874~912番目及び971~1053番目のアミノ酸残基を有し、球状テールドメインは、配列番号20のアミノ酸配列の1054~1501番目のアミノ酸残基を有する。[0110]シャジクモのミオシンXIタンパク質のモータードメインと、上記のミナトカモジグサのミオシンXIタンパク質のネックドメイン、ロッドドメイン及び球状テールドメインとが連結したキメラミオシンXIタンパク質をコードするキメラ遺伝子を含むベクターをシャジクモ及びミナトカモジグサのcDNAからのクローニングとライゲーション等の当業者に周知の方法に従って製造した。アグロバクテリウムを用いてミナトカモジグサのカルスに当業者に周知の方法で導入し、培養後、土又は水等に移植後栽培することによって、成長が増強されたミナトカモジグサの形質転換体を取得することができる。[0111]ミナトカモジグサ以外の単子葉植物をホスト植物として形質転換植物を製造する場合、上記のミナトカモジグサの場合と同様の方法を使用することによって形質転換された単子葉植物を取得することができる。次に、ホスト植物が双子葉植物の場合について、その実験的モデルであるシロイヌナズナを例として、その形質転換植物を製造する場合を以下に説明する。BAA98070.1)由来を使用できる。この場合、ネックドメインは、配列番号34のアミノ酸配列の734~872番目のアミノ酸残基を有し、ロッドドメインは、配列番号34アミノ酸配列の873~946番目及び968~1048番目のアミノ酸残基を有し、球状テールドメインは、配列番号34のアミノ酸配列の1049~1520番目のアミノ酸残基を有する。[0114]シャジクモのミオシンXIタンパク質のモータードメインと、上記のシロイヌナズナのミオシンXIタンパク質のネックドメイン、ロッドドメイン及び球状テールドメインとが連結したキメラミオシンXIタンパク質をコードするキメラ遺伝子を含むベクターをシャジクモ及びシロイヌナズナのcDNAからのクローニングとライゲーション等の当業者に周知の方法に従って製造した。method)によって導入し、形質転換されたトランスジェニック植物を、ハイグロマイシンなどの抗生物質耐性に基づいて選択後、土又は水等に移植後栽培することによって、成長が増強されたシロイヌナズナの形質転換体を取得することができる。[0115]シロイヌナズナ以外の双子葉植物をホスト植物として形質転換植物を製造する場合、上記のシロイヌナズナの場合と同様の方法を使用することによって形質転換された双子葉植物を取得することができる。[0116]上記の方法で得られたトランスジェニック植物は、第1世代のトランスジェニック植物であり、本発明において目的とする成長力が増強された植物である。本明細書において「第1世代トランスジェニック植物」とは、それと同一の遺伝情報を有する第1世代トランスジェニック植物のクローンも包含する。カルス形成後に再生された植物、及び栄養繁殖器官生成された新しい自家栄養体で得られた植物の一部の切断、移植又は層形成を介して得られた植物(第1世代のトランスジェニック植物に由来する無性生殖により得られた植物(例えば、根茎、ツバメナット、コモン、又はランナー)を意味する。植物性の食物の増産、タバコ等の嗜好性植物等の増産、ケシ、イチイ又はトウシキミ等の医薬化合物又はその原料の抽出・単離用の原料植物の増産、バイオマス燃料の増産、及び国土の緑化や林業の促進等をもたらすことができる。本発明のもう1つの実施形態は、形質転換植物から継代された植物である。該形質転換植物から継代された植物は、増強された成長力を有する形質転換植物の子孫であって、増強された成長力との形質を維持する子孫である。[0119]本明細書において、「成長力が増強された形質転換植物から継代された植物」とは、第1の実施形態の製造方法によって得られるキメラミオシンXI遺伝子を保持する第1世代のトランスジェニック植物を交配によって再生して得られる子孫を意味し、該継代された植物の中で遺伝子を発現させることができる。その1例は、第1世代のトランスジェニック植物の実生である。[0120]本発明の生育促進植物の子孫は、公知の方法により得ることができる。第1世代のトランスジェニック植物である成長が増強された植物は、第1世代の子孫である種子及び第2世代のトランスジェニック植物を得るための種子として取得することが可能である。本発明の第1世代の子孫から第2世代の子孫を得る方法の例としては、適当な培地に種子を発根させ、土壌を含む鉢に苗を移植し、第2世代の子孫を適切な培養条件下で培養することによって得ることができる。本実施形態で得られる子孫の作製は、第1の実施形態で説明したキメラミオシンXI遺伝子が子孫に保持されていることを条件として限定されない。したがって、第2世代の子孫を得る方法と同様の方法を繰り返すことにより、第3世代以降の子孫を得ることができる。植物性の食物の増産、タバコ等の嗜好性植物等の増産、ケシ、イチイ又はトウシキミ等の医薬化合物又はその原料の抽出・単離用の原料植物の増産、バイオマス燃料の増産、及び国土の緑化や林業の促進等をもたらすことができる。本発明のもう1つの実施形態は、植物にキメラミオシンXI遺伝子を導入することにより、目的とする標的植物の生育を促進する方法に関する。この実施形態の方法は、第2の実施形態の「増強された成長力を有する植物を製造するための方法」と実質的に同じである。[0123]本明細書において言及される全ての文献はその全体が引用により本明細書に取り込まれる。ここに記述される実施例は本発明の実施形態を例示するものであり、本発明の範囲を限定するものとして解釈されるべきではない。坂山英俊准教授によって構築されたシャジクモ遺伝子のデータベース(非公開)を利用し、定法に従ってクローニングした。australis)の1種類の新高速型ミオシンXI(CaM5049)のモータードメインの遺伝子を、同准教授によって構築されたオーストラリアシャジクモ遺伝子のデータベースを利用し、シャジクモのミオシンXIとオーストラリアシャジクモのミオシンXIによる系統樹を作成し、同定した。坂山英俊准教授から提供されたものを使用した。Transcriptase(TaKaRa)を用いて製造者のプロトコールに従って調製した。次に、各ミオシンのモータードメインの遺伝子を、上記で調製した一本鎖cDNAを用いてRT-PCRにより増幅した。CbM1については下記の順方向プライマー(配列番号1)と逆方向プライマー(配列番号2)との組み合わせで用いて、98°Cで10秒間、68°Cで2分12秒間、及び72°Cで35サイクルを含む反応条件下で実施した。増幅したPCR産物を用いて、下記の順方向プライマー(配列番号3)と逆方向プライマー(配列番号4)との組み合わせで用いて、98°Cで10秒間、68°Cで2分12秒間で35サイクルを含む反応条件下で実施した。[0127]CbM2については下記の順方向プライマー(配列番号5)と逆方向プライマー(配列番号6)との組み合わせで用いて、98°Cで10秒間、68°Cで2分12秒間、及び72°Cで35サイクルを含む反応条件下で実施した。増幅したPCR産物を用いて、下記の順方向プライマー(配列番号7)と逆方向プライマー(配列番号8)との組み合わせで用いて、98°Cで10秒間、68°Cで2分12秒間で35サイクルを含む反応条件下で実施した。Ver.2(TOYOBO)で挿入した。[0129]Flag配列を有するベクターへのサブクローニング各ミオシン遺伝子が挿入されたLitmus28を鋳型にして、CbM1については、下記の順方向プライマー(配列番号9)と逆方向プライマー(配列番号10)との組み合わせで、CbM2については、下記の順方向プライマー(配列番号11)と逆方向プライマー(配列番号12)との組み合わせで、98°Cで10秒間、60°Cで30秒間、及び68°Cで2分12秒で35サイクルを含む反応条件下で実施した。21585-21590)に挿入した。braunii)の2種類の新高速型ミオシンXI(CbM1、CbM2)のモータードメイン遺伝子は、それぞれ、配列番号14のアミノ酸配列をコードする配列番号13の核酸配列と、配列番号16アミノ酸配列をコードする配列番号15の核酸配列とを有した。australis)の新高速型ミオシンXI遺伝子(CaM)のモータードメインは、配列番号17の核酸配列及び配列番号18のアミノ酸配列を有する。図1はミオシンの構造の模式図を示す。braunii)のミオシンXIのモータードメインに変更したキメラミオシンXIを作製した。配列番号19にミナトカモジグサのミオシンXI-B(Bradi2g41977.1)の核酸配列を示し、配列番号20にアミノ酸配列を示す。配列番号21は、作製したキメラミオシンXIの核酸配列を示し、配列番号22はそのアミノ酸配列を示す。vitro運動アッセイミオシンXIのネックドメインには重鎖1分子あたり6個のIQモチーフがあり、ミオシンXIの重鎖1つあたり6分子の軽鎖が結合する(図1)。ミオシンXIが運動するためには重鎖への軽鎖の結合が必須である。ミナトカモジグサのミオシンXIの軽鎖はわかっていない。vitro運動アッセイで測定することができない。19534-19545)。vitro運動アッセイでモータードメインのみの運動速度を測定し、その速度に4倍を掛けて算出した。M2アフィニティーレジン(Sigma-Aldrich)を用いて精製した。対照として、ミナトカモジグサのミオシンXI-B(Bradi2g41977.1)タンパク質のモータードメイン(アミノ酸配列番号24)をコードし、核酸配列番号23で表されるミオシン遺伝子、並びに、シロイヌナズナのミオシンXI-2タンパク質(MYA2)のモータードメイン(アミノ酸配列番号26)をコードし、核酸配列番号25で示されるミオシン遺伝子、及び、オウシャジクモのミオシンXIタンパク質(CcM)のモータードメイン(アミノ酸配列番号28)をコードし、核酸配列番号27で示されるミオシン遺伝子を用いた。vitro運動アッセイによって決定した。21585-21590)に基づく。酢酸ペンチル(WAKO)に溶解した0.1%ニトロセルロースでスライドガラスとカバースリップをコートした。