方法は、生体材料から総脂質を抽出する方法で、特に、水溶性のものと脂溶性のものの分離にも頻用される。抽出して、有機層のカウントをすれば、酵素活性が測れる。RIラベルされた脂質性基質を使えば、逆も可能である。ともに原理としては、クロロフォルムとメタノール、水を使い、脂質はクロロフォルムに、その他は水により溶けやすい性質を利用する。メタノールは、この両者の橋渡し的役割をしていて、この3つを混ぜると、その混合比によるがたいていは2層に分離し、水とメタノールの混液に微量のクロロフォルムがとけ込んだ層が上層に、クロロフォルムにとメタノールの混液に微量の水がとけ込んだ層が下層にくる。通常、中間層には、変性したタンパク質や、多糖類などがくる。1容に対して、メタノール2.5容、クロロフォルム1.25容を加え、よく撹拌する。固形資料の場合は、2分間くらいミキサーで撹拌する。その後、10分間程度、室温に放置する。この段階では、溶液は1層となる。塩基性の脂質の抽出では、溶液をアルカリ性にした方がよいが、殆どの脂質は中性か弱酸性で、酢酸で酸性にした方が抽出効率が高い。=>ここで、最初から、2層に分離する割合でクロロフォルム-メタノールを入れてしまっても問題のないこともある。最初に1層になるように加える意味は、確実に抽出・分離を行うためで、基本的は手抜きしてはいけない。クロロフォルムを1.25容を加えて、よく撹拌する。水溶液(酢酸、または此の段階では水でもよい)を1.25容を加えて、よく撹拌する。この段階で2層となる。最終的に、水:メタノール:クロロフォルムの割合は、0.9:1:1となる。最初の容量によるが、遠心で2層を分離する。遠心力は、実験の目的によるが、確実に2層が分離し、通常白っぽい上層の沈殿物が中間層に沈むまで行う。etc.)充分なことが多い。上層を吸い取って、捨てる。パスツールピペットなどで、下層のみを回収してもよい。ここからの操作は、目的によるが、下記の両者を行えば完璧。用液を下層にほぼ等量(約2容)加え、よく撹拌後遠心分離。溶液は、水:メタノール:クロロフォルム(47:48:3)を用いるが、水:メタノール(1:1)にクロロフォルムを少量加えておいたもので、通常問題ない。クロロフォルム層を、窒素ガスエバポレーターなどで、乾燥させる。基本的にはガラス試験管を用いる。ポリプロピレン製はクロロフォルムに耐えるが、可塑剤として使われているフタル酸などが溶けだし、邪魔をすることがある。浸透圧が問題になることがあり、酢酸などを入れないときは、0.1MのKCl溶液などを使用する。対して最初の1容を1ml程度とするが、もう少し少なくても大抵は問題ない。するだけで、その後、不溶物を遠心、または濾過で取り除き、ナス型コルベンなどで、溶媒をドライアップするだけである。古典的な脂質の生化学をしていた研究室では、何十リットルというクロメタの中に、ウシの臓器などをちゃぽんとつけておいて、そこから脂質を分析していたものである。原法では、この抽出液を0.5%食塩液中に沈め、拡散で、水溶性の成分を除くという面倒くさいステップが入る。