‘CRISPR/Casシステム’は、マウスやラットにおける新しい遺伝子改変技術として注目されている技術です。DNAを切断する酵素Cas9と、ゲノム上の編集箇所を見つけ出すgRNAを動物の受精卵に注入することで、特定の遺伝子を破壊(ノックアウト)したり、特定の箇所へ導入(ノックイン)することができます。これまで動物の受精卵では、遺伝子などの大きなDNA配列の導入効率が低く、ノックイン動物を作製することが困難でした。kbp)の導入、ラット遺伝子のヒト由来遺伝子への置き換え(遺伝子ヒト化動物)に成功しました(図2)。今後、これら二つのノックイン法は、マウスやラットなどのみならず様々な生物種における遺伝子改変操作の効率を向上させ、新しい遺伝子組み換え生物の作製に非常に有用な技術になることが期待されます。幅広い利用が期待されます。Communications」から公開されました。一本鎖DNA(ssODN)を‘のり’として利用することで、プラスミドを標的部位へ効率的にノックインできる。2H2OP法により作製されたGFPノックインラット。ノックイン個体は全身で緑色蛍光タンパク質を発現するため、全身が緑色の蛍光を発する。研究の背景と成果CRISPR/Casの登場により、マウス、ラットなどにおける遺伝子改変が簡単になりました。動物の受精卵にCas9のメッセンジャーRNAとgRNAを導入することで、gRNAが標的となるDNA配列を認識し、Cas9がその標的部位を切断します。joining)により修復されますが、その際に、DNA変異が導入されることで、遺伝子を破壊(ノックアウト)できます。repair)により切断部位が修復され、1~数十塩基(bp)のDNA配列を導入(ノックイン)することができます。これまでssODNは200bp程度までしか合成できず、そのためssODNを用いてGFPなどの大きなサイズのDNA配列をノックインすることが困難でした。長い配列を保持できるDNAプラスミドをドナーDNAとして用いた場合、受精卵では相同組換え効率が低いため、プラスミドDNAをノックインすることが困難でした。本研究の成果は以下になります。Cas9発現プラスミドのターミネーター配列にポリアデニン鎖polyAを付加することで、受精卵でのCas9タンパク質の発現が上昇しました。このCas9-polyAを利用して、受精卵でのゲノム編集効率を向上させることができました。バイオダイナミクス研究所との共同研究により、長鎖の一本鎖DNA(lsODN)の作製方法を新たに開発し、lsODNをドナーDNAとして用いることで効率的および正確にGFP配列をノックインすることに成功しました。kbpのプラスミドを標的部位へ効率的にノックインしました。この2H2OP法を利用することで、これまでノックインが不可能だった大きなサイズ(200-kbp)であるBACプラスミド※7(ヒトSIRPA遺伝子配列全体を含む)をノックインすることに成功しました。利用する3H2OP法により、DNA切断部位を増やすことで、ラットCyp2dクラスター遺伝子座58kbpをヒトCYP2D6遺伝子6.2kbpに置換することに成功しました。一本鎖オリゴを組み合わせることで大きなサイズのDNA配列を効率的にノックインする二つの新しい方法(lsODN法と2H2OP法)を開発しました。lsODNを利用することで、GFPやDsRedなどのレポーター遺伝子を正確にノックインできるため、マウスやラットの遺伝子を標識することができるようになりました。2H2OP法を利用することで、これまで不可能であったBACプラスミドのノックイン、遺伝子クラスターを含むDNA領域の置換などが可能になりました。マウスやラットの遺伝子をノックアウトすると同時に、ヒト遺伝子をノックインした「遺伝子ヒト化動物」※8の作製が可能です。幅広く利用されることが期待されます。らにより初めて発見されました。protein(Cas9)と一緒に複合体として、標的とするDNA配列を切断します。このCRISPR/Casシステムを利用することで、細胞や植物、動物などで効率的な遺伝子改変(ゲノム編集)が可能となりました。oligodeoxynucleotide)とは、一本鎖の直鎖状DNAのことです。arms)が付加されたssODNをドナーDNAとして利用することで、効率的なノックインが可能です。ssODNは化学合成により作られますが、安定して正確に合成できる最大長は、現時点では200塩基程度です。遺伝子の機能を個体レベルで調べる目的で、あるいは、ヒト遺伝性疾患のモデル動物として利用されています。遺伝子改変動物には、遺伝子を破壊する‘ノックアウト’と遺伝子を挿入する‘ノックイン’の2種類があります。遺伝子改変動物を作製するためには、これまで、胚性幹(ES)細胞が利用されてきましたが、CRISPR/Casシステムの登場により、短期間で効率的に行われるようになりました。oligodeoxynucleotide)のことで、バイオダイナミクス研究所との共同研究により、作製することに成功しました。作製したlsODNは、ssODNと同様にドナーDNAとして利用でき、CRISPR/Casシステムを組み合わせることで効率的にノックインできます。2H2OP(2ヒット2オリゴ)法プラスミドDNAなどの大きなDNA配列を導入するために開発した方法で、CRISPR/Casシステムを‘はさみ’として、一本鎖オリゴ(ssODN)を‘のり’として利用します。ゲノム上の標的配列と、導入したいプラスミドDNAを、それぞれ設計した二つのgRNA(はさみ)で切断し、切断点を結合させるために二つのssODN(のり)を利用することで、相同配列がなくても効率的にプラスミドを導入することができます。GFP遺伝子2008年にノーベル化学賞を受賞した下村脩氏によって発見された緑色蛍光タンパク質(GFP)をコードする遺伝子。GFP遺伝子を動物へ導入すると、体内でGFPが合成され、その組織・細胞は緑色の蛍光を発します。したGFPなどのレポーター遺伝子をゲノム上の標的遺伝子の部分に導入することで、その遺伝子が機能する時期や場所を明らかにすることができ、生体内における生命現象を可視化することができます。大腸菌由来の人工染色体プラスミドのことです。kbp程の長い染色体領域をDNA断片としてクローン化することができることから、ヒト全ゲノム領域をクローニングしたBACライブラリーが作製されています。遺伝子ヒト化動物ゲノム編集技術によりヒト遺伝子をノックインすることで、ヒト遺伝子機能を持ったマウス・ラットを作製することができます。肝臓でヒト特有の代謝機能に関連するp450遺伝子群や、ヒト免疫反応に関するMHC遺伝子群などをノックインすることで作製できます。作製されたヒト化動物は、動物とは異なるヒト特有の生理的反応を示すことが期待され、薬物安全性試験や毒性試験、ヒト病態モデルなどに利用できます。