私はくるくる回しながらカッターで切っていますが、無理やり切ると怪我の元です。ニッパーが良いんでしょうけど、バイオ系の実験室には置いていないことが多いです。次にスタンドに取り付けて、バッファーで平衡化します。reservoirってのがなかなか手に入らなくて苦労してるんですよ。洗って使い回しています。リザーバー上部の線までバッファー(約25mL)を注いで、放置します。重力でバッファーが全部落ちるのを待ちます。G-25の上に乗っているフィルターのおかげで、液がなくなると落下がぴたっと止まります。空気が入る心配がありません。リザーバーを外して、フィルターの上にサンプルを乗せます。Dextranと食紅の混合物0.5mLを乗せてみました。分離が始まっているのが見えます。サンプルと合計で2.5mLになるように、バッファーをアプライします。今回はサンプルが0.5mLなので、2mL。Dextranが速く、低分子量の食紅が遅く進んで、くっきり分かれているのがよく見えます。回収用容器をセットして、さらに2mLのバッファーをアプライします。サンプル0.5mLの場合は2mLでだいたい全部回収できます。サンプルがもっと多い場合は、それに合わせて溶出量をもっと増やします。流し続ければ、低分子量の部分も回収できますけど、だいたいはこのままゴミ箱にぽいっと捨ててしまいます。廃棄は各自治体で指定された方法で。酵素や抗体は肉眼では見えないので、アプライする液量と溶出量は予備検討して決めます。Dextranを常備しています。