mLにし4°Cで保存。ul加える(最終5%)。(2枚のガラスの間)の泡をバッファーで吹き飛ばす。サンプルをピペットマンで入れる。定電流で泳動してもいい。BPB色素がゲルの先端近くになったら泳動を止め、バッファを捨てる。ゲル板を外し、ゲルを取り出す。一部を切り取って上下左右がわかるようにしておくといい。染色や銀染色によって検出するのが一般的です。μg程度ですが、簡単にかつ安く染色でき定量性も良好です。それに対して、銀染色はCBB染色に比べて100倍近く高感度なので、CBBでは検出できない時に有効です。CBBに比べタンパク質の種類によって銀発色の発色の違いが大きいという弱点もあります。バックグラウンドが抜けタンパク質のバンドがはっきり見えてきたら、MilliQで10分浸透し、脱色液をMilliQで置き換える。いう4つのステップがあります。それぞれで何を使うかによって多くのプロトコルがありますので、ここでは一例を示します。ゲルを固定液に浸し1時間以上浸透。タンパクを固定するだけでなく、SDSやグリシン、メルカプトエタノールといった、銀染色を妨害する物質を洗い流す意味もある。グルタルアルデヒドを使う増感方法もありその方が増感できるが、タンパク質を修飾してしまうので質量分析などができなくなる。チオ硫酸なら銀染色したバンドを切り出して質量分析も可能。