Las muestras de la biopsia y del absceso recibidas en el laboratorio de Microbiología se cultivaron para bacterias habituales, bacterias de crecimiento lento y micobacterias. El cultivo habitual y para bacterias de crecimiento lento resultó negativo tras quince días de incubación. En cuanto al cultivo de micobacterias, las muestras se sembraron en medio líquido (BBL®, MGIT®, Becton Dickinson) con incubación en estufa automatizada BACTEC® MGIT® 960 y en medio sólido (Lowestein Jensen) con incubación a 37°C. El cultivo en medio líquido detectó la presencia de crecimiento para micobacterias en 13 días, tras lo cual se realizó la tinción de Zielh-Neelsen observando la presencia de bacilos alcohol ácido resistentes (BAAR). En el medio de cultivo sólido se detectó la presencia de una colonia de aspecto rugosa, no cromógena y de crecimiento disgónico. Se confirmó que se trataba de un BAAR y a continuación se realizaron los estudios genotípicos de identificación y resistencia (Geno Type MTBDR plus, Hain Livescience GmbH, Nehren, Alemania) y análisis fenotípicos (BACTEC® MGIT® 960 SIRE y PZA Kits) de susceptibilidad a estreptomicina, isoniazida, rifampicina, etambutol y pirazinamida. Todo estos estudios confirmaron que la cepa se trataba de un M. tuberculosis complex sensible a todos los antituberculosos testeados excepto a pirazinamida. A continuación, se realizó una reacción de polimerasa en cadena (RPC) casera basada en la presencia/ausencia de regiones RD (regions of difference) en el genoma micobacteriano para diferenciar los miembros del complejo M. tuberculosis e indicó que se trataba de la especie Mycobacterium bovis BCG.